| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略语 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-19页 |
| 研究现状、成果 | 第12-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-19页 |
| 一、基于适配体识别和DNA模板控制技术研究目标蛋白的鉴定 | 第19-51页 |
| 1.1 材料和方法 | 第20-30页 |
| 1.1.1 材料 | 第20-21页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第21-22页 |
| 1.1.3 主要溶液、缓冲液配置 | 第22-24页 |
| 1.1.4 细胞培养 | 第24页 |
| 1.1.5 探针的设计、合成和表征 | 第24-25页 |
| 1.1.6 探针的优化 | 第25-26页 |
| 1.1.7 盐离子浓度的影响 | 第26页 |
| 1.1.8 探针对溶菌酶的定量标记 | 第26-27页 |
| 1.1.9 探针对溶菌酶的荧光标记和亲和富集 | 第27-28页 |
| 1.1.10 全蛋白的提取和定量 | 第28页 |
| 1.1.11 蛋清中溶菌酶的提取与定量 | 第28页 |
| 1.1.12 蛋白的质谱表征 | 第28-30页 |
| 1.2 结果与讨论 | 第30-50页 |
| 1.2.1 探针的选择 | 第30-31页 |
| 1.2.2 探针的构建及研究策略 | 第31-32页 |
| 1.2.3 探针的质谱表征 | 第32-34页 |
| 1.2.4 探针的优化 | 第34-37页 |
| 1.2.5 盐离子浓度的优化 | 第37-38页 |
| 1.2.6 探针对溶菌酶的标记和可行性 | 第38-39页 |
| 1.2.7 探针对溶菌酶特异性标记的定量研究 | 第39-40页 |
| 1.2.8 在复杂环境中探针对溶菌酶的标记和富集 | 第40-49页 |
| 1.2.9 在实际体系中对溶菌酶的特异性标记 | 第49-50页 |
| 1.3 小结 | 第50-51页 |
| 二、基于DNA模板多肽探针研究组蛋白翻译后修饰间相互作用 | 第51-68页 |
| 2.1 材料和方法 | 第52-58页 |
| 2.1.1 材料 | 第52-53页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第53页 |
| 2.1.3 主要溶液、缓冲液与培养基 | 第53-54页 |
| 2.1.4 探针的设计合成及表征 | 第54-55页 |
| 2.1.5 重组蛋白PHD domain的构建和纯化 | 第55页 |
| 2.1.6 盐离子浓度的优化 | 第55-56页 |
| 2.1.7 T3磷酸化对K4三甲基化识别reader的影响 | 第56-57页 |
| 2.1.8 探针在复杂背景中对reader的差异性标记 | 第57页 |
| 2.1.9 核蛋白的提取及浓度测定 | 第57-58页 |
| 2.1.10 两种不同探针对内源性结合蛋白的荧光标记 | 第58页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第58-66页 |
| 2.2.1 不同修饰的多肽探针的构建和研究策略 | 第58-59页 |
| 2.2.2 探针的质谱表征 | 第59-62页 |
| 2.2.3 重组蛋白的SDS-PAGE表征 | 第62页 |
| 2.2.4 盐离子浓度的优化 | 第62-63页 |
| 2.2.5 T3磷酸化对K4三甲基化识别reader的影响 | 第63-65页 |
| 2.2.6 探针在BSA背景下对reader标记差异 | 第65-66页 |
| 2.2.7 两种探针在核蛋白中的荧光标记差异 | 第66页 |
| 2.3 小结 | 第66-68页 |
| 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-77页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第77-78页 |
| 综述 DNA适配体在肿瘤生物标志物发现中的方法及应用 | 第78-87页 |
| 综述参考文献 | 第83-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 个人简历 | 第88页 |
