| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第8-14页 |
| 一、抗PD-1/PD-L1抗体活性方法建立 | 第14-43页 |
| 1、实验试剂与仪器 | 第14-16页 |
| 1.1 主要试剂与材料 | 第14页 |
| 1.2 主要试剂配制 | 第14-15页 |
| 1.3 主要设备名称 | 第15-16页 |
| 2、实验方法 | 第16-27页 |
| 2.1 报告基因细胞株构建 | 第16-19页 |
| 2.2 细胞培养 | 第19页 |
| 2.3 抗PD-1/PD-L1抗体报告基因法方法优化 | 第19-21页 |
| 2.4 方法验证 | 第21-23页 |
| 2.5 细胞稳定性 | 第23页 |
| 2.6 CHO-PD-L1-CD3L和Jurkat-PD1NFAT细胞支原体检测 | 第23-24页 |
| 2.7 CHO-PD-L1-CD3L和Jurkat-PD1NFAT细胞内、外病毒因子检测 | 第24-27页 |
| 3、结果 | 第27-41页 |
| 3.1 CHO-PD-L1-CD3细胞株构建 | 第27-28页 |
| 3.2 Jurkat-PD1NFAT细胞构建 | 第28-29页 |
| 3.3 确定量效范围 | 第29页 |
| 3.4 抗体不同稀释倍数 | 第29-31页 |
| 3.5 两种细胞效靶比优化 | 第31页 |
| 3.6 铺板时间的优化 | 第31-32页 |
| 3.7 孵育时间的优化 | 第32-33页 |
| 3.8 方法优化结果 | 第33页 |
| 3.9 专属性 | 第33-34页 |
| 3.10 准确性 | 第34页 |
| 3.11 线性 | 第34-35页 |
| 3.12 精密性 | 第35-36页 |
| 3.13 方法应用 | 第36-38页 |
| 3.14 细胞稳定性 | 第38页 |
| 3.15 支原体检测结果 | 第38-40页 |
| 3.16 鸡胚接种结果 | 第40-41页 |
| 4、讨论 | 第41-42页 |
| 5、小结 | 第42-43页 |
| 二、抗IL-6/IL-6R抗体报告基因生物学活性方法的建立 | 第43-51页 |
| 1、实验试剂与仪器 | 第43-44页 |
| 1.1 主要试剂与材料 | 第43页 |
| 1.2 主要试剂配制 | 第43-44页 |
| 1.3 主要仪器 | 第44页 |
| 2、实验方法 | 第44-46页 |
| 2.1 报告基因细胞株构建 | 第44-45页 |
| 2.2 细胞培养 | 第45页 |
| 2.3 方法优化 | 第45-46页 |
| 3、实验结果 | 第46-50页 |
| 3.1 细胞构建 | 第46-48页 |
| 3.2 孵育时间 | 第48页 |
| 3.3 量效范围 | 第48-49页 |
| 3.4 稀释倍数 | 第49-50页 |
| 4、小结 | 第50-51页 |
| 总结 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-55页 |
| 综述 | 第55-69页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 主要中英文缩略词 | 第70-72页 |
| 个人简历 | 第72-73页 |
| 硕士期间发表文章 | 第73-74页 |
