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固定化GABA受体及固定化大鼠小肠组织的电化学生物传感器的研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
第一章 前言第11-20页
    1.1 选题背景第11-12页
    1.2 酸枣仁以及酸枣仁皂苷A简介第12页
    1.3 GABA(γ-氨基丁酸)及其受体GABAR第12-15页
        1.3.1 简介第12-13页
        1.3.2 GABA_B受体分布及作用第13页
        1.3.3 GABA_B受体结构第13-14页
        1.3.4 GABA_B受体激活的下游信号第14-15页
    1.4 肠道和肠道神经系统(enteric nervous system,ENS)第15-17页
        1.4.1 肠道简介第15页
        1.4.2 肠神经系统(enteric nervous system,ENS)简介第15-16页
        1.4.3 肠道主要神经递质及其受体分布第16-17页
    1.5 传感器的概念及分类以及常用的电化学分析方法第17-18页
    1.6 选题依据和意义第18-20页
第二章 固定化大鼠小肠组织的电化学生物传感器的研究第20-33页
    2.1 实验材料与方法第20-21页
        2.1.1 实验材料和试剂第20页
        2.1.2 实验仪器第20-21页
        2.1.3 实验方法第21页
    2.2 实验结果及讨论第21-33页
        2.2.1 电极预处理效果的电化学表征第21-22页
        2.2.2 电极组装过程及电化学表征第22-23页
        2.2.3 电流-时间测定法的电位优化第23-24页
        2.2.4 酸枣仁皂苷A与其受体的检测范围第24-25页
        2.2.5 酸枣仁皂苷A与其受体作用规律的曲线第25-27页
        2.2.6 酸枣仁皂苷A与其受体作用的双倒数图第27-28页
        2.2.7 激活常数第28-29页
        2.2.8 平均每个细胞的受体数量第29-30页
        2.2.9 小肠组织生物传感器的信号放大倍数第30-31页
        2.2.10 小肠组织生物传感器的稳定性及重现性第31-33页
第三章 固定化GABA受体的电化学生物传感器的研究第33-52页
    3.1 实验材料与方法第33-40页
        3.1.1 GABA_BR1a在HEK-293T细胞的表达和获取第33-38页
        3.1.2 双层纳米金修饰GABA_BR1a受体电化学生物传感器的制备及检测第38-40页
    3.2 实验结果与分析第40-52页
        3.2.1 pcDNA3.1-GABA_BR1a重组质粒在HEK-293T细胞的转染结果第40-42页
        3.2.2 纳米金溶胶的UV-Vis及TEM表征第42-44页
        3.2.3 双层纳米金修饰的GABA_BR1a受体型生物传感器组装过程的电化学表征第44-45页
        3.2.4 双层纳米金修饰的GABA_BR1a受体型生物传感器测定条件的优化第45-46页
        3.2.5 被测物物质与GABA_BR1a受体的作用规律第46页
        3.2.6 被测物质与GABA_BR1a受体作用的动力学曲线第46-49页
        3.2.7 被测物质与GABA_BR1a受体作用的效应常数第49-50页
        3.2.8 双层纳米金修饰的GABA_BR1a受体传感器的稳定性及重现性第50-52页
第四章 结论第52-54页
    4.1 结论第52-53页
        4.1.1 固定化GABA受体的电化学生物传感器的研究第52页
        4.1.2 固定化大鼠小肠组织的电化学生物传感器的研究第52-53页
    4.2 研究创新点第53页
    4.3 需要改进的地方第53-54页
第五章 展望第54-55页
参考文献第55-63页
发表论文及参加科研情况说明第63-64页
致谢第64-65页

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