| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-34页 |
| 一. TAMs和TIDCs与肿瘤的关系 | 第11-18页 |
| 1.1 巨噬细胞的功能 | 第11-12页 |
| 1.2 TAMs | 第12-15页 |
| 1.2.1 TAMs的表型及特征 | 第12-13页 |
| 1.2.2 TAMs在肿瘤发生发展中的作用 | 第13-15页 |
| 1.3 TIDCs | 第15-18页 |
| 1.3.1 DCs的功能 | 第15-16页 |
| 1.3.2 TIDCs的表型及特征 | 第16-17页 |
| 1.3.3 TIDCs在肿瘤发生发展中的作用 | 第17-18页 |
| 二. 靶向TAMs与TIDCs治疗肿瘤的研究进展 | 第18-23页 |
| 2.1 靶向TAMs在肿瘤治疗中的运用 | 第18-20页 |
| 2.1.1 通过控制TAMs的招募 | 第18-19页 |
| 2.1.2 促使TAMs由M2型转换成M1型 | 第19-20页 |
| 2.1.3 抑制TAMs的存活 | 第20页 |
| 2.2 靶向TIDCs在肿瘤治疗中的运用 | 第20-23页 |
| 2.2.1 改善TIDCs的抗原提呈能力 | 第21页 |
| 2.2.2 恢复TIDCs成熟表型 | 第21-23页 |
| 三. Let-7b | 第23-27页 |
| 3.1 核酸在治疗中的运用 | 第23-24页 |
| 3.2 let-7家族 | 第24页 |
| 3.3 let-7b与肿瘤的关系 | 第24-25页 |
| 3.4 let-7b的作用 | 第25-27页 |
| 参考文献 | 第27-34页 |
| 第二章 实验部分 | 第34-59页 |
| 一. 引言 | 第34-35页 |
| 二. 实验仪器和实验材料 | 第35-36页 |
| 2.1 实验仪器 | 第35-36页 |
| 2.2 实验材料 | 第36页 |
| 三. 实验方法 | 第36-44页 |
| 3.1 阳离子化白芨多糖(cBSP)的制造方法 | 第36-37页 |
| 3.2 组氨酸修饰海藻酸盐(Alginate) | 第37页 |
| 3.3 let-7b & vector的制备 | 第37页 |
| 3.4 小鼠乳腺癌模型的建立 | 第37-38页 |
| 3.5 TAMs的分离 | 第38页 |
| 3.6 TIDCs的提取 | 第38页 |
| 3.7 let-7b刺激TAMs和TIDCs的能力检测 | 第38-39页 |
| 3.8 TAMs的表型转换检测 | 第39页 |
| 3.9 细胞转染实验 | 第39页 |
| 3.10 let-7b在组织和细胞分布检测 | 第39-40页 |
| 3.11 let-7b抗肿瘤能力检测 | 第40页 |
| 3.12 Q-PCR | 第40-43页 |
| 3.13 免疫荧光和免疫组化 | 第43-44页 |
| 3.13.1 免疫荧光 | 第43页 |
| 3.13.2 免疫组化 | 第43-44页 |
| 四. 实验结果 | 第44-57页 |
| 4.1 体外转染cBSP&let-7b复合物 | 第44-46页 |
| 4.2 let-7b的组织中分布和细胞定位 | 第46-50页 |
| 4.3 Let-7b逆转TAMs表型和恢复TIDCs免疫功能 | 第50-52页 |
| 4.4 let-7b & vector的抗肿瘤活性 | 第52-53页 |
| 4.5 体内检测let-7b & vector给药后TAMs和TIDCs状态 | 第53-56页 |
| 4.6 let-7 & vector对肿瘤微环境的影响 | 第56-57页 |
| 五. 总结与讨论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-60页 |
| 附录硕士期间发表的论文 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
