| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 第一章 绪论 | 第16-29页 |
| 1.1 转基因作物的发展现状 | 第16-18页 |
| 1.2 转基因作物的安全性问题及其标识管理 | 第18-19页 |
| 1.2.1 转基因作物的安全性问题 | 第18页 |
| 1.2.2 转基因作物的标识管理 | 第18-19页 |
| 1.3 转基因作物及其产品检测方法 | 第19-27页 |
| 1.3.1 基于蛋白质的检测技术 | 第19-20页 |
| 1.3.2 基于外源DNA的检测技术 | 第20-27页 |
| 1.4 本研究的目的意义 | 第27页 |
| 1.5 本研究的主要内容 | 第27-29页 |
| 第二章 基于SiO_2@CdTe信号放大的光电化学传感器的构建及对转基因大豆中P35S的检测 | 第29-45页 |
| 2.1 实验部分 | 第30-35页 |
| 2.1.1 药品与试剂 | 第30-31页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第31页 |
| 2.1.3 rGO-AuNPs纳米复合材料的制备 | 第31-32页 |
| 2.1.4 probe2-SiO_2@CdTe捕获探针的制备 | 第32-33页 |
| 2.1.5 修饰电极的制备 | 第33页 |
| 2.1.6 光电化学实验方法 | 第33页 |
| 2.1.7 PEC传感器检测机理 | 第33-34页 |
| 2.1.8 PEC传感器测定P35S启动子 | 第34页 |
| 2.1.9 实际转基因大豆样品检测 | 第34-35页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第35-43页 |
| 2.2.1 AuNPs-rGO纳米复合材料的表征 | 第35页 |
| 2.2.2 probe2-SiO_2@CdTe信号探针的表征 | 第35-37页 |
| 2.2.3 不同修饰电极的EIS分析 | 第37-38页 |
| 2.2.4 不同修饰电极的光电流响应 | 第38-39页 |
| 2.2.5 实验条件优化 | 第39-41页 |
| 2.2.6 PEC传感器应用于P35S启动子的检测 | 第41-42页 |
| 2.2.7 传感器的选择性、重现性以及稳定性 | 第42-43页 |
| 2.2.8 PEC传感器应用于实际样品转基因大豆中P35S启动子的检测 | 第43页 |
| 2.3 本章小结 | 第43-45页 |
| 第三章 基于AgNPs-NGQDs的FRET传感体系对转基因大豆中P35S的检测 | 第45-57页 |
| 3.1 实验部分 | 第46-48页 |
| 3.1.1 药品与试剂 | 第46页 |
| 3.1.2 仪器设备 | 第46-47页 |
| 3.1.3 NGQDs-probel捕获探针的制备 | 第47页 |
| 3.1.4 AgNPs-probe2固定探针的制备 | 第47-48页 |
| 3.1.5 AgNPs-NGQDs的FRET传感体系的构建及对P35S的检测 | 第48页 |
| 3.1.6 FRET传感体系对实际转基因大豆样品的检测 | 第48页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第48-56页 |
| 3.2.1 NGQDs的表征 | 第48-50页 |
| 3.2.2 AgNPs的表征 | 第50-51页 |
| 3.2.3 纳米复合探针的表征 | 第51-52页 |
| 3.2.4 检测原理及实验条件优化 | 第52-53页 |
| 3.2.5 对P35S启动子的荧光检测 | 第53-54页 |
| 3.2.6 传感体系的选择性和重现性 | 第54-55页 |
| 3.2.7 实际转基因大豆样品的检测 | 第55-56页 |
| 3.3 本章小结 | 第56-57页 |
| 第四章 金磁微粒联合荧光微球构建的磁控生物传感体系对转基因大豆中P35S和TNOS的同时检测 | 第57-74页 |
| 4.1 实验部分 | 第58-62页 |
| 4.1.1 药品与试剂 | 第58-59页 |
| 4.1.2 仪器设备 | 第59页 |
| 4.1.3 MBs的制备 | 第59-60页 |
| 4.1.4 QDs@SiO_2@QDs的制备 | 第60页 |
| 4.1.5 MBs-FT和MBs-FP的制备 | 第60-61页 |
| 4.1.6 gQDs@SiO_2@gQDs-CT和rQDs@SiO_2@rQDs-CP的制备 | 第61页 |
| 4.1.7 磁控生物传感体系对启动子P35S和终止子NOS的同时检测 | 第61-62页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第62-73页 |
| 4.2.1 Fe_3O_4@Au MBs的表征 | 第62-63页 |
| 4.2.2 gQDs@SiO_2@gQDs相rQDs@SiO_2@rQDs的表征 | 第63-65页 |
| 4.2.3 多功能纳米复合生物探针的表征 | 第65-67页 |
| 4.2.4 磁控纳米生物复合物的检测原理 | 第67-68页 |
| 4.2.5 检测条件优化 | 第68-70页 |
| 4.2.6 对启动子P35S和终止子NOS的同时检测 | 第70-71页 |
| 4.2.7 传感体系的选择性和重现性 | 第71-72页 |
| 4.2.8 实际转基因大豆中TNOS和P35S的同时检测 | 第72-73页 |
| 4.3 本章小结 | 第73-74页 |
| 第五章 基于碳纳米材料对QDs的荧光“开-关-开”效应构建的生物传感体系对转基因大豆中P35S和TNOS的同时检测 | 第74-85页 |
| 5.1 实验部分 | 第75-77页 |
| 5.1.1 药品与试剂 | 第75-76页 |
| 5.1.2 仪器设备 | 第76页 |
| 5.1.3 MWCNTs@GONRs的制备 | 第76页 |
| 5.1.4 gQDs-CT和rQDs-CT纳米生物探针的制备 | 第76页 |
| 5.1.5 基于荧光“开-关-开”效应构建的生物传感体系对P35S和TNOS的同时检测 | 第76-77页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第77-84页 |
| 5.2.1 多色量子点标记的纳米生物探针的表征 | 第77-78页 |
| 5.2.2 MWCNTs@GONRs吸附纳米生物探针的表征 | 第78-79页 |
| 5.2.3 基于荧光“开-关-开”传感体系的检测原理 | 第79-80页 |
| 5.2.4 检测条件的优化 | 第80-81页 |
| 5.2.5 对终止子TNOS和启动子P35S的同时检测 | 第81-82页 |
| 5.2.6 传感体系的选择性、重现性和稳定性 | 第82-83页 |
| 5.2.7 传感体系对实际转基因大豆中TNOS和P35S的同时检测 | 第83-84页 |
| 5.3 本章小结 | 第84-85页 |
| 第六章 基于QDs荧光成像和机器视觉技术同时检测转基因大豆中TNOS和P35S | 第85-93页 |
| 6.1 实验材料 | 第85-87页 |
| 6.1.1 实验试剂及显色原理 | 第85页 |
| 6.1.2 机器视觉检测系统 | 第85-87页 |
| 6.1.3 试剂样本 | 第87页 |
| 6.2 图像采集与分析 | 第87-90页 |
| 6.2.1 图像采集 | 第87-88页 |
| 6.2.2 图像分割 | 第88-89页 |
| 6.2.3 图像特征数据分析 | 第89-90页 |
| 6.3 结果与分析 | 第90-92页 |
| 6.3.1 对P35S的检测分析 | 第90-91页 |
| 6.3.2 对TNOS的检测分析 | 第91-92页 |
| 6.4 本章小节 | 第92-93页 |
| 第七章 结论与展望 | 第93-96页 |
| 7.1 结论 | 第93-95页 |
| 7.2 展望 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 攻读博士学位期间取得的学术成果 | 第111-112页 |
