| 摘要 | 第10-13页 |
| ABSTRACT | 第13-16页 |
| 缩略语的中英文对照 | 第17-18页 |
| 第一篇 文献综述 | 第18-50页 |
| 第一章 性成熟启动的神经内分泌调控研究进展 | 第18-24页 |
| 1 控制性成熟启动的神经元组分 | 第18-20页 |
| 1.1 GnRH释放的兴奋性跨突触调节 | 第19页 |
| 1.2 GnRH释放的抑制性跨突触调节 | 第19-20页 |
| 2 控制性成熟启动的神经胶质组分 | 第20-22页 |
| 参考文献 | 第22-24页 |
| 第二章 性成熟启动的遗传决定机制研究进展 | 第24-38页 |
| 1 性成熟启动相关候选基因系统 | 第24-30页 |
| 1.1 KiSS1/GPR54系统 | 第24-26页 |
| 1.2 LIN28系统 | 第26页 |
| 1.3 NKB系统 | 第26-27页 |
| 1.4 GnRH/GnRHR系统 | 第27-28页 |
| 1.5 MKRN3印记基因 | 第28-29页 |
| 1.6 Leptin/NPY系统 | 第29-30页 |
| 2 性成熟启动的多基因等级调节网络 | 第30-33页 |
| 2.1 TRG网络 | 第30-31页 |
| 2.2 LIN28B网络 | 第31页 |
| 2.3 ZNF网络 | 第31页 |
| 2.4 性成熟启动的表观调控 | 第31-33页 |
| 参考文献 | 第33-38页 |
| 第三章 MIRNA与发育时机调控研究进展 | 第38-46页 |
| 1 异时MIRNA调节发育时机 | 第38-41页 |
| 1.1 miRNA与线虫发育调节 | 第38-41页 |
| 1.2 miRNA与植物开花调节 | 第41页 |
| 1.3 miRNA与果蝇发育调节 | 第41页 |
| 1.4 miRNA与哺乳动物性成熟启动调节 | 第41页 |
| 2 异时MIRNA和异时基因的保守性 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 第四章 血清循环MIRNA研究进展 | 第46-50页 |
| 1 血清(浆)中存在大量MIRNA | 第46页 |
| 2 血清循环MIRNA来源广泛 | 第46页 |
| 3 血清循环MIRNA表达稳定 | 第46-47页 |
| 4 血清循环MIRNA敏感性和特异性强 | 第47页 |
| 5 循环MIRNA应用领域不断拓展 | 第47页 |
| 6 循环MIRNA检测技术成熟 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-50页 |
| 第二篇 试验内容 | 第50-120页 |
| 第一章 文昌鸡性成熟启动时机及进程度量 | 第50-56页 |
| 1 材料和方法 | 第50-52页 |
| 1.1 实验材料 | 第50页 |
| 1.2 不同周龄性腺组织发育度量 | 第50-51页 |
| 1.3 不同周龄血清LH水平度量 | 第51-52页 |
| 1.4 数据处理 | 第52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-53页 |
| 2.1 不同周龄性腺组织发育性变化 | 第52页 |
| 2.2 不同周龄血清LH水平变化 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-54页 |
| 3.1 性腺组织发育与鸡性成熟启动度量 | 第53页 |
| 3.2 血清LH水平与鸡性成熟启动度量 | 第53-54页 |
| 4 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-56页 |
| 第二章 文昌鸡性成熟启动前后下丘脑基因表达规律分析 | 第56-70页 |
| 1 材料和方法 | 第56-60页 |
| 1.1 实验材料 | 第56页 |
| 1.2 下丘脑组织样采集 | 第56页 |
| 1.3 组织RNA提取和PCR产物克隆测序 | 第56-58页 |
| 1.4 qPCR检测 | 第58页 |
| 1.5 统计分析 | 第58-60页 |
| 2 结果与分析 | 第60-64页 |
| 2.1 组织总RNA质量检测 | 第60页 |
| 2.2 基因扩增曲线和溶解曲线 | 第60页 |
| 2.3 基因扩增片段克隆测序 | 第60-61页 |
| 2.4 基因表达水平分析 | 第61-64页 |
| 3 讨论 | 第64-67页 |
| 3.1 c-Myc/LIN28/let-7通路与鸡性成熟启动 | 第64-65页 |
| 3.2 POK/PcG/TRG通路与鸡性成熟启动 | 第65-67页 |
| 4 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-70页 |
| 第三章 文昌鸡性成熟启动前后下丘脑MIRNA表达谱分析 | 第70-92页 |
| 1 材料和方法 | 第70-76页 |
| 1.1 实验材料 | 第70-71页 |
| 1.2 下丘脑组织样采集 | 第71页 |
| 1.3 文库构建和测序 | 第71-73页 |
| 1.4 序列数据分析 | 第73-75页 |
| 1.5 靶基因预测和功能分析 | 第75-76页 |
| 2 结果与分析 | 第76-86页 |
| 2.1 文库质量检测 | 第76-77页 |
| 2.2 饱和度分析 | 第77-79页 |
| 2.3 小RNA文库测序统计 | 第79-81页 |
| 2.4 已知miRNA鉴定 | 第81-82页 |
| 2.5 新miRNA预测 | 第82页 |
| 2.6 差异表达miRNA分析 | 第82-83页 |
| 2.7 差异表达miRNA qPCR验证 | 第83-84页 |
| 2.8 差异表达miRNA靶基因预测 | 第84-86页 |
| 2.9 靶基因功能分析 | 第86页 |
| 3 讨论 | 第86-88页 |
| 3.1 下丘脑中的miRNA | 第86-87页 |
| 3.2 鸡性成熟启动相关miRNA | 第87-88页 |
| 4 结论 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-92页 |
| 第四章 文昌鸡性成熟启动前后血清循环MIRNA表达谱分析 | 第92-120页 |
| 1 材料和方法 | 第92-96页 |
| 1.1 实验材料 | 第92-93页 |
| 1.2 血清(血浆)制备 | 第93页 |
| 1.3 血清(血浆)外泌体提取 | 第93-94页 |
| 1.4 测序实验流程 | 第94页 |
| 1.5 测序数据质量控制 | 第94-95页 |
| 1.6 数据分析流程 | 第95-96页 |
| 2 实验结果 | 第96-113页 |
| 2.1 血清(血浆)小RNA质量检测 | 第96-98页 |
| 2.2 测序数据种类分布 | 第98-99页 |
| 2.3 长度分布统计 | 第99页 |
| 2.4 已知miRNA鉴定 | 第99-100页 |
| 2.5 新发现miRNA | 第100页 |
| 2.6 差异表达miRNA分析 | 第100-102页 |
| 2.7 差异表达miRNA靶基因预测和功能分析 | 第102-103页 |
| 2.8 miRNA成簇分析 | 第103页 |
| 2.9 差异表达miRNA qPCR检测 | 第103-113页 |
| 3 讨论 | 第113-114页 |
| 3.1 鸡性成熟启动前后差异循环miRNA | 第113页 |
| 3.2 鸡性成熟启动度量循环miRNA标记 | 第113-114页 |
| 4 结论 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-120页 |
| 全文结论 | 第120-122页 |
| 创新点 | 第122-124页 |
| 致谢 | 第124-126页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第126-128页 |
| 附录 | 第128-162页 |
