摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩略表 | 第8-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-21页 |
1 细胞学研究 | 第13页 |
2 生物化学研究 | 第13-14页 |
3 生产性状研究 | 第14页 |
4 分类研究 | 第14-15页 |
5 DNA分子标记技术的发展 | 第15-19页 |
5.1 第一类分子标记技术 | 第15-16页 |
5.2 第二类DNA分子标记技术 | 第16-19页 |
5.2.1 RAPD技术 | 第16页 |
5.2.2 SSR技术 | 第16-17页 |
5.2.3 AFLP扩增片段长度多态性标记 | 第17-18页 |
5.2.4 EST表达序列标签技术 | 第18-19页 |
5.3 ISSR分子标记技术作为聚类分析、多态性分析和分子辅助育种的应用 | 第19页 |
6 研究意义与目的 | 第19页 |
7 技术路线 | 第19-21页 |
第二章 汝城白毛茶资源基本生化成分分析 | 第21-25页 |
1 材料与方法 | 第21-22页 |
1.1 材料来源 | 第21页 |
1.2 主要仪器 | 第21页 |
1.3 主要试剂 | 第21页 |
1.4 样品制备 | 第21页 |
1.5 测定方法 | 第21页 |
1.6 数据统计 | 第21-22页 |
2 结果与分析 | 第22-24页 |
2.1 汝城白毛茶主要生化成分的检测分析 | 第22-23页 |
2.2 汝城白毛茶春茶酚氨比的分析 | 第23-24页 |
3 小结 | 第24-25页 |
第三章 汝城白毛茶儿茶素组分分析与优良单株选育 | 第25-29页 |
1 材料与方法 | 第25页 |
1.1 材料来源 | 第25页 |
1.2 主要仪器 | 第25页 |
1.3 主要试剂 | 第25页 |
1.4 测定方法 | 第25页 |
2 结果与分析 | 第25-27页 |
3 汝城白毛茶特异单株的筛选 | 第27-28页 |
3.1 汝城白毛茶优质资源的筛选 | 第27-28页 |
3.2 汝城白毛茶特异资源的筛选 | 第28页 |
4 讨论 | 第28-29页 |
第四章 汝城白毛茶氨基酸组分及含量分析 | 第29-34页 |
1 材料与方法 | 第29-30页 |
1.1 材料来源 | 第29页 |
1.2 主要仪器 | 第29页 |
1.3 主要试剂 | 第29页 |
1.4 样品制备 | 第29页 |
1.5 测定方法 | 第29页 |
1.6 数据处理 | 第29-30页 |
2 结果与分析 | 第30-33页 |
2.1 汝城白毛必需氨基酸组分及含量分析 | 第30-31页 |
2.2 汝城白毛茶氨基酸组成含量分析 | 第31-32页 |
2.3 汝城白毛茶脯氨酸组分和谷氨酸组分及含量分析 | 第32-33页 |
3 小结 | 第33-34页 |
第五章 汝城白毛茶亲缘关系的研究 | 第34-47页 |
1 材料与方法 | 第34-36页 |
1.1 材料 | 第34-35页 |
1.1.2 仪器与设备 | 第34页 |
1.1.3 主要试剂 | 第34-35页 |
1.2 实验方法 | 第35-36页 |
1.2.1 DNA提取 | 第35页 |
1.2.2 ISSR-PCR反应体系优化与建立 | 第35页 |
1.2.3 ISSR-PCR反应环境与检测方法 | 第35-36页 |
1.3 数据处理与分析 | 第36页 |
2 结果与分析 | 第36-40页 |
2.1 IDNA提取结果分析 | 第36页 |
2.2 筛选引物及其最佳退火温度 | 第36-37页 |
2.3 单因素实验 | 第37-40页 |
2.3.1 DNA浓度对于PCR实验的影响 | 第37页 |
2.3.2 Mg~(2+)对PRC扩增的影响 | 第37-38页 |
2.3.3 dNTP浓度对PCR扩增的影响 | 第38-39页 |
2.3.4 Taq酶浓度对PCR扩增的影响 | 第39页 |
2.3.5 引物浓度对PCR反应堆影响 | 第39-40页 |
2.4 汝城白毛茶ISSR-PCR正交试验 | 第40页 |
3 汝城白毛茶ISSR扩增结果 | 第40-44页 |
3.1 汝城白毛茶ISSR扩增产物的多态性 | 第40-42页 |
3.2 汝城白毛茶群体各单株相似系数与聚类 | 第42-44页 |
4 讨论 | 第44-45页 |
4.1 汝城白毛茶的遗传多样性 | 第44-45页 |
4.2 汝城白毛茶的群体资源的保护与利用 | 第45页 |
5 结论 | 第45-47页 |
创新与展望 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-54页 |
附录 | 第54-76页 |
致谢 | 第76-77页 |
作者简介 | 第77页 |