| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩写符号表 | 第8-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-21页 |
| 1.1 研究背景 | 第12-20页 |
| 1.1.1 山楂叶简介 | 第12页 |
| 1.1.2 山楂叶化学成分 | 第12-15页 |
| 1.1.3 山楂叶总黄酮的提取方法 | 第15-17页 |
| 1.1.4 山楂叶中黄酮成分的分离纯化 | 第17-18页 |
| 1.1.5 山楂叶总黄酮的含量测定 | 第18页 |
| 1.1.6 山楂叶黄酮药理活性 | 第18-20页 |
| 1.2 立题依据及意义 | 第20-21页 |
| 第二章 山楂叶质量评价 | 第21-32页 |
| 2.1 实验试剂、设备及材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 主要试剂及药品 | 第21-22页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第22页 |
| 2.1.3 实验材料 | 第22页 |
| 2.2 山楂叶表观质量鉴定 | 第22页 |
| 2.3 TLC法鉴别四个产区山楂叶 | 第22-23页 |
| 2.4 总黄酮含量测定 | 第23页 |
| 2.4.1 供试品制备 | 第23页 |
| 2.4.2 标准曲线制备 | 第23页 |
| 2.4.3 样品测定 | 第23页 |
| 2.5 HP含量测定 | 第23-24页 |
| 2.5.1 待测样品制备 | 第23-24页 |
| 2.5.2 标准液制备 | 第24页 |
| 2.5.3 样品测定 | 第24页 |
| 2.6 结果及讨论 | 第24-28页 |
| 2.6.1 外观质地观察 | 第24-25页 |
| 2.6.2 TLC法鉴别四个产区药材成分 | 第25页 |
| 2.6.3 含量测定结果 | 第25-28页 |
| 2.7 酸水解-HPLC法测定山楂叶中黄酮苷元 | 第28-31页 |
| 2.7.1 混合对照品制备 | 第28-29页 |
| 2.7.2 芦丁酸水解预试 | 第29页 |
| 2.7.3 HCl水解条件预试 | 第29页 |
| 2.7.4 HPLC分析条件 | 第29-30页 |
| 2.7.5 实验结果 | 第30-31页 |
| 2.8 小结 | 第31-32页 |
| 第三章 山楂叶黄酮提取及分离分析 | 第32-40页 |
| 3.1 实验仪器、及试剂 | 第32页 |
| 3.2 山楂叶黄酮提取工艺优化 | 第32-35页 |
| 3.2.1 实验室小试 | 第32-35页 |
| 3.2.2 提取中试放大 | 第35页 |
| 3.2.3 山楂叶总黄酮生产 | 第35页 |
| 3.3 山楂叶总黄酮的纯化 | 第35-37页 |
| 3.3.1 醇提水沉法 | 第35页 |
| 3.3.2 总黄酮大孔树脂纯化 | 第35-37页 |
| 3.3.3 工厂生产纯化 | 第37页 |
| 3.4 黄酮单体的制备 | 第37-39页 |
| 3.5 小结 | 第39-40页 |
| 第四章 VR对高糖诱导的内皮细胞损伤的保护作用研究 | 第40-53页 |
| 4.1 实验仪器及试剂 | 第40-42页 |
| 4.1.1 仪器 | 第40-41页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第41-42页 |
| 4.2 主要试剂及药液的配置 | 第42页 |
| 4.3 细胞培养 | 第42-43页 |
| 4.3.1 复苏 | 第42页 |
| 4.3.2 传代 | 第42-43页 |
| 4.3.3 细胞计数 | 第43页 |
| 4.3.4 细胞冻存 | 第43页 |
| 4.4 实验内容 | 第43-52页 |
| 4.4.1 MTT法细胞活性检测 | 第43-44页 |
| 4.4.2 实验分组 | 第44-45页 |
| 4.4.3 细胞培养与加药 | 第45页 |
| 4.4.4 SOD、MDA检测 | 第45-47页 |
| 4.4.5 RealTime-PCR测定Bcl-2、Caspase-3基因表达 | 第47-50页 |
| 4.4.6 Western Blot法检测BCl-2、Caspase-3蛋白的表达 | 第50-52页 |
| 4.5 小结 | 第52-53页 |
| 结论与展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
