| 提要 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 引言 | 第16-20页 |
| 第一章 文献回顾 | 第20-42页 |
| 1.1 脓毒症 | 第20-22页 |
| 1.1.1 脓毒症的病因 | 第20页 |
| 1.1.2 脓毒症的分型 | 第20-22页 |
| 1.1.3 脓毒症的危害 | 第22页 |
| 1.2 中性粒细胞 | 第22-30页 |
| 1.2.1 中性粒细胞的形态学特点 | 第23-24页 |
| 1.2.2 中性粒细胞的分型 | 第24页 |
| 1.2.3 中性粒细胞的生存周期 | 第24-25页 |
| 1.2.4 中性粒细胞在感染中的功能 | 第25-28页 |
| 1.2.5 脓毒症对中性粒细胞功能的影响 | 第28-29页 |
| 1.2.6 中性粒细胞功能异常的影响因素 | 第29-30页 |
| 1.3 表面TOLL样受体 9 | 第30-36页 |
| 1.3.1 Toll样受体家族 | 第31页 |
| 1.3.2 Toll样受体对核酸的识别 | 第31-32页 |
| 1.3.3 Toll样受体信号途径 | 第32-34页 |
| 1.3.4 Toll样受体 9 | 第34页 |
| 1.3.5 TLR9与脓毒症 | 第34-35页 |
| 1.3.6 TLR9与中性粒细胞 | 第35页 |
| 1.3.7 表面Toll样受体 9（s TLR9） | 第35-36页 |
| 1.4 白细胞介素-17（IL-17） | 第36-42页 |
| 1.4.1 IL-17A | 第36页 |
| 1.4.2 IL-17 家族 | 第36-37页 |
| 1.4.3 IL-17 的功能 | 第37-38页 |
| 1.4.4 生成IL-17 的细胞 | 第38页 |
| 1.4.5 IL-17 的信号机制 | 第38-39页 |
| 1.4.6 IL-17 与中性粒细胞 | 第39页 |
| 1.4.7 IL-17 与感染 | 第39-40页 |
| 1.4.8 IL-17 与脓毒症 | 第40页 |
| 1.4.9 IL-17 与TLR9 | 第40-42页 |
| 第二章 研究方案 | 第42-44页 |
| 2.1 研究目的 | 第42页 |
| 2.2 研究方案 | 第42-44页 |
| 第三章 材料方法 | 第44-50页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第44-45页 |
| 3.1.1 菌株 | 第44页 |
| 3.1.2 实验动物 | 第44页 |
| 3.1.3 抗体和试剂 | 第44-45页 |
| 3.1.4 主要实验器材 | 第45页 |
| 3.2 实验方法 | 第45-49页 |
| 3.2.1 大肠杆菌JM109菌种的制备 | 第45页 |
| 3.2.2 大肠杆菌菌液浓度测定 | 第45页 |
| 3.2.3 大肠杆菌工作菌液的制备 | 第45-46页 |
| 3.2.4 细菌性脓毒症性腹膜炎模型的建立 | 第46页 |
| 3.2.5 TLR9抑制剂和激动剂对小鼠生存期作用的评估 | 第46页 |
| 3.2.6 小鼠PLCs的制备 | 第46-47页 |
| 3.2.7 检测脓毒症腹膜炎小鼠PLCs的细胞数量以及细胞形态的变化 | 第47页 |
| 3.2.8 正常小鼠PLCs的体外大肠杆菌刺激和BFA阻断实验 | 第47页 |
| 3.2.9 流式检测小鼠PLCs中不同类型细胞及其中s TLR9、IL-17的动态变化 | 第47-48页 |
| 3.2.10 脓毒症腹膜炎小鼠PLCs中PMN及T细胞的流式分选试验 | 第48页 |
| 3.2.11 脓毒症性腹膜炎小鼠PLCs及分选的PMN、T细胞中IL-17m RNA检测 | 第48-49页 |
| 3.3 统计学分析 | 第49-50页 |
| 第四章 研究结果 | 第50-76页 |
| 4.1 腹腔注射E.COLI对小鼠脓毒症性腹膜炎的诱导作用 | 第50-55页 |
| 4.1.1 E.coli诱导腹膜炎小鼠的临床表现 | 第50页 |
| 4.1.2 E.coli诱导腹膜炎小鼠的生存期 | 第50-51页 |
| 4.1.3 腹膜炎小鼠腹腔灌洗细胞及炎症细胞的数量和形态 | 第51-54页 |
| 4.1.4 腹膜炎小鼠PLC炎症因子相关m RNA的表达水平 | 第54-55页 |
| 4.2 腹膜炎小鼠PLC中PMN及其亚群的分析 | 第55-58页 |
| 4.2.1 腹膜炎小鼠PLC中PMN的比例变化 | 第55-56页 |
| 4.2.2 腹膜炎小鼠PLC中PMN亚群的比例变化 | 第56-58页 |
| 4.3 腹膜炎小鼠PLC及其PMN亚群中STLR9+细胞比例的分析 | 第58-60页 |
| 4.4 腹膜炎小鼠PLC及其PMN亚群中IL-17 的分析 | 第60-68页 |
| 4.4.1 腹膜炎小鼠PLC中IL-17~+细胞的比例分析 | 第60-61页 |
| 4.4.2 腹膜炎小鼠PLC中IL-17~+PMN亚群的比例分析 | 第61-63页 |
| 4.4.3 体外阻断分泌后检测细菌感染的小鼠PLC中IL-17~+细胞的比例 | 第63-64页 |
| 4.4.4 腹膜炎小鼠PLC中IL-17 m RNA的表达水平 | 第64-66页 |
| 4.4.5 腹膜炎小鼠在感染后更早时间PLC中不同细胞IL-17 的表达水平 | 第66-68页 |
| 4.5 腹膜炎小鼠PLC中PMN的STLR9和IL-17 的表达及其相关性 | 第68-70页 |
| 4.5.1 腹膜炎小鼠PLC中PMN亚群及巨噬细胞s TLR9的表达水平 | 第68-69页 |
| 4.5.2 s TLR9和IL-17 在CD11b~+ PMN表达的关系 | 第69-70页 |
| 4.6 TLR9激动剂或抑制剂对腹膜炎小鼠的干预作用 | 第70-76页 |
| 4.6.1 TLR9激动剂或抑制剂对腹膜炎小鼠生存期的影响 | 第70-71页 |
| 4.6.2 TLR9激动剂或抑制剂对腹膜炎小鼠PLC中TLR9和IL-17m RNA表达水平的影响 | 第71-72页 |
| 4.6.3 TLR9激动剂或抑制剂对腹膜炎小鼠PLC及PMN亚群s TLR9水平的影响 | 第72-74页 |
| 4.6.4 TLR9激动剂或抑制剂对腹膜炎小鼠PLC及PMN亚群IL-17 水平的影响 | 第74-76页 |
| 第五章 讨论 | 第76-86页 |
| 5.1 脓毒症性腹膜炎小鼠模型的建立 | 第76-78页 |
| 5.1.1 致病原明确 | 第77页 |
| 5.1.2 术式简单，创伤小 | 第77-78页 |
| 5.1.3 感染的菌量精确 | 第78页 |
| 5.2 PLC的数量变化 | 第78-80页 |
| 5.2.1 PMN的比例变化及其意义 | 第78-79页 |
| 5.2.2 PMN的不同亚型细胞的比例变化及其意义 | 第79-80页 |
| 5.3 特异性巨细胞的特点及意义 | 第80页 |
| 5.4 STLR9的表达对中性粒细胞和脓毒症的意义 | 第80-81页 |
| 5.5 IL-17 的表达对中性粒细胞和脓毒症的意义 | 第81-83页 |
| 5.6 PMNS中STLR9的表达与IL-17 的表达之间的关联 | 第83页 |
| 5.7 展望 | 第83-86页 |
| 结论 | 第86-88页 |
| 创新点 | 第88-90页 |
| 参考文献 | 第90-110页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第110-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
