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pPCP1质粒上小RNAHmsA对鼠疫菌生物膜形成和毒力的分子调控机制研究

文中缩略词第1-8页
摘要第8-11页
Abstract第11-14页
前言第14-28页
 1.鼠疫耶尔森氏菌的基本特性及其研究意义第14-16页
   ·鼠疫菌的生物学特性第14-15页
   ·鼠疫菌的质粒组成及特点第15页
   ·鼠疫菌的危害与研究意义第15-16页
 2.小RNA的研究进展第16-18页
   ·小RNA的基本特征第16页
   ·小RNA的作用机制及分类第16-18页
 3. 生物膜的形成及其与小RNA的关系第18-20页
   ·生物膜的基本特征第18页
   ·小RNA调控生物膜形成的机制第18-20页
 4.鼠疫菌中生物膜形成的调控机制第20-22页
 5.鼠疫菌的致病性及其毒力因子组成第22-25页
   ·鼠疫菌的致病性和致病机理第22页
   ·鼠疫菌的毒力因子及其组成第22-24页
   ·鼠疫菌毒力因子的调控机制第24-25页
 6.本课题的研究内容、研究目的、研究意义及技术路线第25-28页
第一章 小RNA Hms A的基本特性及其缺失突变菌株和过表达菌株的构建第28-48页
 引言第28-29页
 材料和方法第29-42页
  1.材料第29-30页
   ·菌株和质粒第29页
   ·主要试剂及试剂盒第29页
   ·主要使用仪器第29-30页
   ·本章所用引物第30页
  2.方法第30-42页
   ·甘油菌种的制备与细菌的培养第30-31页
   ·小RNA HmsA过表达质粒和菌株的构建第31-34页
     ·小RNA过表达空质粒的改造构建第31-33页
     ·小RNA HmsA过表达质粒的构建第33页
     ·小RNA HmsA过表达菌株的构建第33-34页
   ·鼠疫菌总RNA的提取第34-36页
   ·Northern印迹实验(Northern blotting assay)第36-39页
     ·RNA探针的制备第36-37页
     ·电泳、转膜、交联与杂交第37-38页
     ·洗膜和显影第38-39页
   ·引物延伸实验(Primer extension assay)第39-42页
     ·靶标基因特异引物的设计与标记第39-40页
     ·靶标基因测序体系的合成第40-41页
     ·引物延伸实验第41-42页
 结果与讨论第42-48页
   ·新发现小RNA HmsA测序结果的序列分析第42-43页
   ·小RNA HmsA的分子学实验验证第43-44页
   ·小RNA HmsA的基本特性第44-45页
   ·小RNA HmsA缺失突变菌株和过表达菌株的构建和验证第45-47页
   ·讨论第47-48页
第二章 小RNA HmsA影响鼠疫菌生物膜形成和毒力的表型分析第48-58页
 引言第48-49页
 材料和方法第49-53页
  1.材料第49页
   ·菌株和质粒第49页
   ·主要试剂及动物模型第49页
   ·主要仪器第49页
  2.方法第49-53页
   ·甘油菌种的制备与细菌的培养第49-50页
   ·鼠疫菌的生物膜表型实验第50-53页
     ·菌落表面褶皱实验第50页
     ·生物膜结晶紫染色实验第50-51页
     ·线虫虫卵发育实验第51-52页
     ·鼠疫菌中c-di-GMP浓度的测定第52-53页
   ·鼠疫菌的小鼠攻毒实验第53页
 结果与讨论第53-58页
   ·小RNA HmsA促进鼠疫菌生物膜的形成及c-di-GMP的合成第53-55页
   ·小RNA HmsA抑制鼠疫菌的毒力第55-56页
   ·讨论第56-58页
第三章 小RNA Hms A调控鼠疫菌生物膜形成和毒力的分子实验验证第58-78页
 引言第58-59页
 材料和方法第59-67页
  1.材料第59-61页
   ·菌株和质粒第59页
   ·主要试剂及试剂盒第59页
   ·主要仪器第59-60页
   ·本课题所用引物第60-61页
  2.方法第61-67页
   ·甘油菌种的制备与细菌的培养第61-62页
   ·鼠疫菌总RNA的提取第62页
   ·引物延伸实验(Primer extension assay)第62-63页
   ·Northern印迹实验(Northern blotting assay)第63页
   ·实时定量PCR(Real time Quantitative PCR,qRT-PCR)第63-66页
     ·去DNA污染第63-64页
     ·总RNA逆转录为cDNA第64页
     ·实时定量PCR反应第64-66页
   ·β -半乳糖苷酶(LacZ)报告基因融合实验(LacZ fusion)第66-67页
     ·LacZ实验菌株的构建第66页
     ·检测不同菌株的β -半乳糖苷酶活性第66-67页
 结果与讨论第67-78页
   ·小RNA HmsA间接正调控hmsHFRS操纵子第67-68页
   ·小RNA HmsA在转录后水平正调控hmsT基因第68-69页
   ·小RNA HmsA在转录后水平正调控hmsCDE操纵子第69-70页
   ·小RNA HmsA能促进小RNA HmsB的稳定第70-71页
   ·小RNA HmsA不调控hmsP基因第71-72页
   ·小RNA HmsA不调控fur基因第72-73页
   ·小RNA HmsA间接负调控rovA基因第73-74页
   ·小RNA HmsA间接正调控rovM基因第74-75页
   ·小RNA HmsA间接负调控psaABC和psaEF操纵子第75-76页
   ·讨论第76-78页
第四章 鼠疫菌小RNA直接靶标基因筛选平台的建立与验证第78-94页
 引言第78-79页
 材料和方法第79-84页
   ·菌株和质粒第79-80页
   ·本研究所用引物第80页
   ·主要试剂和仪器第80页
   ·甘油菌种的制备与细菌培养第80-81页
   ·构建ompF基因的gfp报告基因融合载体第81页
   ·构建小RNA MicF的过表达质粒第81-82页
   ·荧光显影和绝对荧光值的测定第82页
   ·Western Blot实验第82-84页
   ·Northern Blot实验第84页
 结果与讨论第84-94页
   ·鼠疫菌自身质粒影响小RNA MicF介导的对ompF基因的翻译抑制第84-85页
   ·pPCP1质粒是影响小RNA MicF介导的对ompF基因翻译抑制的主要因素第85-87页
   ·在导入pXG-ompF::gfp和pBAD-MicF质粒后鼠疫菌自身质粒不受影响第87-88页
   ·鼠疫菌自身质粒也不影响小RNA MicF的存在和过表达第88-89页
   ·过表达质粒表达的小RNA MicF显著高于鼠疫菌自身表达第89-90页
   ·过表达的小RNA MicF抑制鼠疫菌自身ompF基因的mRNA水平和翻译且这种抑制受到鼠疫菌pPCP1质粒的影响第90-92页
   ·在带有不同质粒的鼠疫菌中Hfq蛋白的表达没有明显差异第92页
   ·讨论第92-94页
第五章 小RNA HmsA直接靶标基因的筛选第94-102页
 引言第94-95页
 材料和方法第95-97页
   ·菌株和质粒第95页
   ·主要试剂及试剂盒第95页
   ·主要仪器第95-96页
   ·本研究所用引物第96页
   ·甘油菌种的制备与细菌的培养第96-97页
   ·gfp报告基因融合实验(gfp reporter fusion)第97页
 结果与讨论第97-102页
   ·hmsT基因是小RNA HmsA调控鼠疫菌生物膜形成的直接靶标基因第97-99页
   ·rovA、rovM基因以及psaABC、psaEF操纵子不是小RNA HmsA调控鼠疫菌毒力的直接靶标基因第99-101页
   ·讨论第101-102页
小结第102-104页
参考文献第104-114页
附录第114-119页
 附录1 试剂、溶液的配置方法第114-117页
 附录2 HmsA二级结构及其与靶标基因作用位点的预测第117-119页
攻读博士期间所发表论文第119-120页
个人简历第120-121页
致谢第121-122页

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