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组蛋白变异体H2A.X在卵母细胞裂解液逆转化小鼠胎儿成纤维细胞(MEFs)成为诱导性多能干细胞(iPSC)中的作用研究

摘要第1-11页
Abstract第11-14页
第1章 文献综述第14-26页
 1. 卵母细胞裂解液重编程体细胞的研究现状第14-17页
   ·体细胞重编程第14-15页
   ·卵母细胞裂解液重编程体细胞为多能干细胞的研究现状第15页
   ·影响卵母细胞裂解液重编程体细胞效率的因素第15-17页
 2. 组蛋白变异体的研究现状第17-23页
   ·H2A.X第17-19页
   ·H2A.Z第19-20页
   ·H2A.Bbd第20-22页
   ·MacroH2A第22-23页
 3.结语与展望第23-26页
第2章 试验研究第26-54页
 试验1 小鼠卵母细胞裂解液逆转化MEFs为iPSCs的研究第26-35页
  1. 材料第27-29页
   ·实验动物第27页
   ·主要仪器设备第27页
   ·主要药品及试剂第27-28页
   ·溶液配制第28-29页
  2.方法第29-31页
   ·MEFs的分离、培养和饲养层的制备第29页
   ·小鼠GV期卵母细胞裂解液的制备第29-30页
   ·不同浓度GV期卵母细胞裂解液逆转化MEFs为iPSCs效率的影响第30-31页
  3. 结果与分析第31-32页
   ·不同浓度卵母细胞裂解液对MEFs重编程效率的影响第31-32页
   ·TSA和 5-Aza-dC对卵母细胞裂解液重编程MEFs效率的影响第32页
   ·小鼠GV期卵母细胞裂解液逆转化MEFs所得细胞集落的多能性鉴定第32页
  4. 讨论第32-35页
 试验2 组蛋白变异体H2A.X蛋白的重组表达及分离纯化第35-43页
  1. 材料第35-37页
   ·实验动物第35页
   ·仪器设备第35页
   ·药品及试剂第35页
   ·溶液配制第35-37页
  2. 方法第37-40页
   ·重组蛋白的表达第37-39页
   ·重组组蛋白变异体H2A.X蛋白的分离提纯第39-40页
  3. 结果与分析第40-42页
   ·质粒DNA的提取与酶切验证第40-41页
   ·质粒转染及阳性细胞的筛选第41-42页
   ·BCA标准曲线及蛋白浓度测定第42页
   ·H2A.X蛋白电泳结果第42页
  4. 讨论第42-43页
 试验3 不同分化阶段小鼠细胞变异体H2A.X蛋白含量的测定第43-48页
  1. 材料第43页
   ·实验动物第43页
   ·仪器设备第43页
   ·药品及试剂第43页
   ·主要溶液配置第43页
  2. 方法第43-45页
   ·不同阶段细胞的的获取第44页
   ·ELISA抗原抗体包被浓度的筛选第44页
   ·卵母细胞裂解液及早期胚胎中H2A.X含量的检测第44-45页
  3. 结果与分析第45-46页
   ·早期胚胎第45页
   ·二抗包被浓度的筛选第45-46页
   ·ELISA标准曲线及各样品中H2A.X含量第46页
  4. 讨论第46-48页
 试验4 H2A.X对小鼠卵母细胞裂解液逆转化MEFs为iPSCs效率的影响第48-54页
  1. 材料第48页
   ·实验动物第48页
   ·仪器及设备第48页
   ·药品及试剂第48页
   ·溶液的配制第48页
  2. 方法第48-50页
   ·第三代MEFs的复苏第48-49页
   ·MEFs的渗透化处理第49页
   ·不同浓度的H2A.X蛋白与卵母细胞裂解液共孵育MEFs第49页
   ·TSA、5-Aza-dC和组蛋白变异体H2A.X对卵母细胞裂解液重编程效率的影响第49页
   ·重编程所得集落多能性鉴定第49-50页
  3.结果与分析第50-52页
   ·不同浓度H2A.X蛋白与卵母细胞裂解液重编程MEFs所得细胞集落数的比第50页
   ·TSA、5-Aza-dC和H2A.X蛋白对卵母细胞裂解液逆转化MEFs效率的影响第50页
   ·外源性H2A.X蛋白对重编程前后MEFs和iPSCs的H2A.X蛋白水平的影响第50-51页
   ·不同浓度H2A.X蛋白与卵母细胞裂解液逆转化MEFs所得细胞集落的多能性鉴定第51-52页
  4.讨论第52-54页
结论第54-56页
参考文献第56-66页
附录:缩略词表第66-68页
致谢第68页

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