摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
目录 | 第8-12页 |
1 绪论 | 第12-27页 |
·研究背景 | 第12-13页 |
·农药概述 | 第13-19页 |
·农药的定义和分类 | 第13页 |
·我国农药的使用现状及残留问题 | 第13-14页 |
·农药的残留危害 | 第14-15页 |
·有机磷农药的分类 | 第15-17页 |
·有机磷农药的化学性质 | 第17-19页 |
·有机磷农药分析方法进展 | 第19-26页 |
·波谱法 | 第19-20页 |
·色谱分析法 | 第20-23页 |
·免疫分析法 | 第23-24页 |
·酶抑制法 | 第24-25页 |
·生物传感器法 | 第25-26页 |
·本论文的主要内容 | 第26-27页 |
2 实验原理和材料 | 第27-32页 |
·前言 | 第27页 |
·实验原理 | 第27-29页 |
·以乙酸-β-萘酯和固蓝B盐为显色剂的反应原理 | 第27-28页 |
·以2,6-二氯乙酰靛酚为显色剂的反应原理 | 第28-29页 |
·Co~(2+)对植物酯酶法测定有机磷农药残留的活化作用原理 | 第29页 |
·供试药品与试剂 | 第29-30页 |
·农药标准品 | 第29页 |
·试剂 | 第29-30页 |
·pH6.0缓冲溶液的配制 | 第30页 |
·乙酸-β-萘酯和固蓝B盐显色剂(显色剂1)的配制 | 第30页 |
·2,6-二氯靛酚显色剂(显色剂2)的制备 | 第30页 |
·植物酯酶的提取及纯化 | 第30-31页 |
·双水萃取法萃取液的制备 | 第30-31页 |
·粗酶液的制备 | 第31页 |
·植物酯酶的双水萃取法纯化 | 第31页 |
·主要的仪器设备 | 第31-32页 |
3 植物酯酶应用于农药残留分析技术的研究进展 | 第32-42页 |
·引言 | 第32页 |
·植物酯酶酶源的研究 | 第32-34页 |
·植物酯酶抑制法显色剂的选择 | 第34-35页 |
·乙酰胆碱+溴百里酚蓝的显色原理 | 第34页 |
·乙酸羟基吲哚的显色原理 | 第34-35页 |
·植物酯酶提取、纯化及固化工艺的研究 | 第35-38页 |
·植物酯酶提取工艺的研究 | 第35-36页 |
·植物酯酶纯化工艺的研究 | 第36-37页 |
·植物酯酶固化工艺的研究 | 第37-38页 |
·植物酯酶应用于农残分析的方法研究 | 第38-40页 |
·植物酯酶分光光度法 | 第38-39页 |
·植物酯酶生物传感器法 | 第39-40页 |
·植物酯酶抑制法实验条件的研究 | 第40-41页 |
·问题与展望 | 第41-42页 |
4 植物酯酶抑制法两种显色剂的性能比较 | 第42-50页 |
·引言 | 第42页 |
·实验方法 | 第42-43页 |
·最大吸收波长的选择 | 第42页 |
·显色剂稳定性比较 | 第42页 |
·最适宜pH的选择 | 第42-43页 |
·最佳温度的选择 | 第43页 |
·JJDLL对植物酯酶的最佳作用时间 | 第43页 |
·JJDLL对酶的抑制率随其浓度对数的变化 | 第43页 |
·回收率的比较 | 第43页 |
·实验结果和分析 | 第43-48页 |
·最大吸收波长的选择 | 第44-45页 |
·显色剂稳定性比较 | 第45页 |
·最适宜pH的选择 | 第45页 |
·最佳温度的选择 | 第45页 |
·JJDLL对植物酯酶的最佳作用时间 | 第45-47页 |
·JJDLL对酶的抑制率随其浓度对数的变化 | 第47-48页 |
·回收率的比较 | 第48页 |
·生成物的稳定性 | 第48页 |
·结论 | 第48-50页 |
5 Co~(2+)在植物酯酶抑制法测定有机磷农药残留中的活化作用 | 第50-55页 |
·引言 | 第50页 |
·实验方法 | 第50-51页 |
·显色剂、最大吸收波长的选择、显色最佳时间、温度和pH的选择 | 第50页 |
·酶液最佳用量的确定 | 第50页 |
·Co~(2+)最佳用量的确定 | 第50-51页 |
·JJDLL对酶的抑制率与其浓度对数的关系 | 第51页 |
·回收率的比较 | 第51页 |
·实验结果和分析 | 第51-54页 |
·酶液最佳用量的确定 | 第51-53页 |
·Co~(2+)最佳用量的确定 | 第53页 |
·JJDLL对酶的抑制率与其浓度对数的关系 | 第53页 |
·回收率的比较 | 第53-54页 |
·结论 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
攻读硕士期间发表的论文 | 第65页 |