| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-13页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-35页 |
| 1 骨质疏松概述 | 第15-24页 |
| ·骨质疏松的定义和危害 | 第15页 |
| ·骨质疏松的分类及发生机制 | 第15-17页 |
| ·骨重建的细胞学机制 | 第17-20页 |
| ·骨重建的相关信号通路 | 第20-24页 |
| 2 骨质疏松的防治药物及新进展 | 第24-29页 |
| ·防治骨质疏松的临床用药及其特点 | 第24-26页 |
| ·防治骨质疏松药物新进展 | 第26-29页 |
| 3 中医药防治骨质疏松 | 第29-32页 |
| ·中医药防治骨质疏松现状 | 第29页 |
| ·杜仲防治骨质疏松研究进展 | 第29-32页 |
| 4 本课题研究内容 | 第32-35页 |
| ·研究目的和意义 | 第32-33页 |
| ·本课题研究方案和内容 | 第33-35页 |
| 第二章 杜仲提取物及有效组分的制备和测定 | 第35-53页 |
| 1 材料与仪器 | 第35-36页 |
| ·实验材料 | 第35页 |
| ·主要仪器及试剂 | 第35-36页 |
| 2 实验方法 | 第36-45页 |
| ·杜仲提取物制备工艺优化 | 第36-39页 |
| ·杜仲防治骨质疏松有效组分的制备 | 第39-40页 |
| ·杜仲有效组分中主要化合物含量测定 | 第40-45页 |
| ·统计学分析 | 第45页 |
| 3 实验结果 | 第45-50页 |
| ·主要因素筛选 | 第45-46页 |
| ·提取工艺优化 | 第46-50页 |
| ·杜仲防治骨质疏松有效组分制备 | 第50页 |
| ·HPLC 法测定杜仲 40 组分中 PDG、AU 和 GP 含量 | 第50页 |
| 4 讨论 | 第50-53页 |
| 第三章 杜仲提取物对废用性骨质疏松的预防作用 | 第53-67页 |
| 1 材料与仪器 | 第53-54页 |
| ·实验动物 | 第53页 |
| ·主要仪器及试剂 | 第53-54页 |
| ·实验药品及配制 | 第54页 |
| 2 实验方法 | 第54-60页 |
| ·动物分组 | 第54页 |
| ·灌胃给药治疗 | 第54-55页 |
| ·尾悬吊方法 | 第55页 |
| ·大鼠各种标本采集及处理 | 第55-56页 |
| ·各项评价指标的检测方法 | 第56-59页 |
| ·统计学处理 | 第59-60页 |
| 3 实验结果 | 第60-64页 |
| ·杜仲提取物对尾悬吊大鼠体重的影响 | 第60页 |
| ·杜仲提取物对尾悬吊大鼠脏器的影响 | 第60-61页 |
| ·杜仲提取物对尾悬吊大鼠血清及尿液生化指标的影响 | 第61-62页 |
| ·杜仲提取物对尾悬吊大鼠 BMD 的影响 | 第62页 |
| ·杜仲提取物对尾悬吊大鼠股骨生物力学性能的影响 | 第62-63页 |
| ·杜仲提取物对尾悬吊大鼠股骨形态结构特性的影响 | 第63-64页 |
| 4 讨论 | 第64-67页 |
| 第四章 杜仲防治骨质疏松有效组分筛选 | 第67-91页 |
| 1 材料与仪器 | 第67-69页 |
| ·实验材料 | 第67页 |
| ·主要仪器及试剂 | 第67-68页 |
| ·主要溶液的配制 | 第68-69页 |
| 2 实验方法 | 第69-72页 |
| ·酶消化法分离原代大鼠成骨细胞 | 第69页 |
| ·MC3T3-E1 细胞复苏与传代 | 第69-70页 |
| ·MTT 法测定成骨细胞增殖 | 第70页 |
| ·成骨细胞 ALP 活性测定 | 第70-71页 |
| ·成骨细胞矿化 | 第71页 |
| ·统计学分析 | 第71-72页 |
| 3 实验结果 | 第72-88页 |
| ·原代细胞鉴定 | 第72页 |
| ·杜仲萃取组分对成骨细胞促成骨的影响 | 第72-77页 |
| ·杜仲树脂洗脱组分对成骨细胞促成骨的影响 | 第77-82页 |
| ·杜仲 40 组分主要单体对成骨细胞促成骨的影响 | 第82-88页 |
| 4 讨论 | 第88-91页 |
| 第五章 杜仲有效组分对废用性骨质疏松的预防作用 | 第91-105页 |
| 1 材料与仪器 | 第91-92页 |
| ·实验材料 | 第91页 |
| ·主要仪器及试剂 | 第91-92页 |
| ·实验药品及配制 | 第92页 |
| 2 实验方法 | 第92-96页 |
| ·动物分组 | 第92页 |
| ·灌胃给药治疗 | 第92-93页 |
| ·尾悬吊方法 | 第93页 |
| ·大鼠各种标本采集及处理 | 第93-94页 |
| ·各项评价指标的检测方法 | 第94-95页 |
| ·统计学处理 | 第95-96页 |
| 3 实验结果 | 第96-103页 |
| ·杜仲 40 组分对尾悬吊大鼠体重的影响 | 第96页 |
| ·杜仲 40 组分对尾悬吊大鼠脏器的影响 | 第96-97页 |
| ·杜仲 40 组分对尾悬吊大鼠 BMD 的影响 | 第97-98页 |
| ·杜仲 40 组分对尾悬吊大鼠骨矿含量的影响 | 第98页 |
| ·杜仲 40 组分对尾悬吊大鼠血清及尿液生化指标的影响 | 第98-99页 |
| ·杜仲 40 组分对尾悬吊大鼠股骨生物力学性能的影响 | 第99页 |
| ·杜仲 40 组分对尾悬吊大鼠股骨形态结构特性的影响 | 第99页 |
| ·杜仲 40 组分对尾悬吊大鼠骨生长速度影响 | 第99-103页 |
| 4 讨论 | 第103-105页 |
| 第六章 杜仲对成骨细胞相关信号通路影响 | 第105-126页 |
| 1 材料与仪器 | 第105-107页 |
| ·实验材料 | 第105页 |
| ·主要仪器及试剂 | 第105-107页 |
| 2 实验方法 | 第107-113页 |
| ·原代大鼠成骨细胞的培养 | 第107页 |
| ·Real-Time PCR 法检测相关 mRNA 表达 | 第107-110页 |
| ·Western blot 检测蛋白表达 | 第110-113页 |
| ·统计学处理 | 第113页 |
| 3 实验结果 | 第113-122页 |
| ·杜仲 40 组分及主要单体对 Wnt/β-catenin 信号通路的影响 | 第113-114页 |
| ·杜仲 40 组分及主要单体对 BMP-2/Runx-2 信号通路的影响 | 第114-120页 |
| ·杜仲 40 组分及主要单体对 OPG/RANKL 信号通路的影响 | 第120-122页 |
| 4 讨论 | 第122-126页 |
| 第七章 结论 | 第126-128页 |
| 参考文献 | 第128-139页 |
| 缩略语表 | 第139-141页 |
| 致谢 | 第141-143页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文和参加科研情况 | 第143-145页 |
