| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 1 文献综述 | 第8-18页 |
| ·植物的光合作用 | 第8-15页 |
| ·光合作用 | 第8页 |
| ·光系统 | 第8-10页 |
| ·光系统 I | 第8-9页 |
| ·光系统 II | 第9-10页 |
| ·光抑制 | 第10-13页 |
| ·PSII 修复循环 | 第13-15页 |
| ·D1 蛋白 | 第13-14页 |
| ·FtsH 蛋白酶 | 第14-15页 |
| ·高温胁迫 | 第15-16页 |
| ·高温胁迫对植物生物膜的影响 | 第15页 |
| ·高温胁迫对植物光合作用的影响 | 第15-16页 |
| ·高温强光复合胁迫 | 第16页 |
| ·本研究立题依据和研究意义 | 第16-18页 |
| 2 杨梅叶片气体交换 | 第18-24页 |
| ·试验材料 | 第18页 |
| ·试验设计与方法 | 第18-19页 |
| ·叶片气体交换测定 | 第18-19页 |
| ·测定不同温度下的净光合速率 Pn | 第18页 |
| ·光温交互处理方法 | 第18-19页 |
| ·测定不同光温交互处理的叶片气体交换参数 | 第19页 |
| ·数据分析 | 第19页 |
| ·结果与分析 | 第19-23页 |
| ·不同温度处理下的净光合速率 Pn | 第19-20页 |
| ·不同水平光温交互处理的叶片气体交换参数 | 第20-23页 |
| ·讨论 | 第23-24页 |
| 3 克隆杨梅 ftsH（编码 FtsH 蛋白酶）基因 cDNA 全长 | 第24-37页 |
| ·试验材料 | 第24页 |
| ·植物材料 | 第24页 |
| ·主要化学试剂 | 第24页 |
| ·主要试验仪器设备 | 第24页 |
| ·试验设计与方法 | 第24-29页 |
| ·Mrftsh 基因全长 cDNA 的分离及序列分析 | 第25-28页 |
| ·总 RNA 的提取 | 第25页 |
| ·RNA 质量检测 | 第25-26页 |
| ·反转录 | 第26页 |
| ·克隆目标片段 | 第26-27页 |
| ·获得杨梅 ftsh 基因全长 cDNA 序列 | 第27-28页 |
| ·ftsH 基因生物信息学分析 | 第28页 |
| ·ftsH 基因的亚细胞定位 | 第28-29页 |
| ·双元表达载体 35S:MrftsH-GFP 的构建 | 第28页 |
| ·亚细胞定位分析 | 第28-29页 |
| ·结果与分析 | 第29-35页 |
| ·RNA 质量检测 | 第29-30页 |
| ·杨梅 ftsh 基因全长 cDNA 的分离 | 第30-31页 |
| ·ftsH 基因生物信息学分析 | 第31-35页 |
| ·MrftsH 基因的亚细胞定位分析 | 第35页 |
| ·讨论 | 第35-37页 |
| 4 杨梅 MrftsH 基因在光、热胁迫条件下的表达模式 | 第37-45页 |
| ·试验材料 | 第37页 |
| ·植物材料 | 第37页 |
| ·主要化学试剂 | 第37页 |
| ·主要试验仪器设备 | 第37页 |
| ·试验设计与方法 | 第37-39页 |
| ·总 RNA 的提取 | 第37-38页 |
| ·RNA 质量检测 | 第38页 |
| ·RNA 反转录 | 第38页 |
| ·qRT-PCR | 第38-39页 |
| ·引物设计 | 第38页 |
| ·qPCR | 第38-39页 |
| ·数据分析 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-43页 |
| ·Total RNA 的提取分析 | 第39页 |
| ·qRT-PCR 引物特异性分析 | 第39-40页 |
| ·光温交互处理下 MrftsH 基因的表达水平差异 | 第40-43页 |
| ·讨论 | 第43-45页 |
| 5 光温胁迫对叶片蛋白表达水平的影响 | 第45-52页 |
| ·试验材料 | 第45页 |
| ·植物材料 | 第45页 |
| ·主要化学试剂 | 第45页 |
| ·主要试验仪器设备 | 第45页 |
| ·试验设计与方法 | 第45-47页 |
| ·试剂配制 | 第45-46页 |
| ·样品处理 | 第46页 |
| ·SDS-PAGE 分析 | 第46页 |
| ·Western-Blotting | 第46-47页 |
| ·数据分析 | 第47页 |
| ·结果与分析 | 第47-50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| 6 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 附录 | 第60-62页 |
| 个人简介 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
