| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 第1章 引言 | 第9-19页 |
| ·费菜的主要成分 | 第9-10页 |
| ·费菜的应用研究 | 第10-12页 |
| ·药理学研究 | 第10-11页 |
| ·毒理学研究 | 第11页 |
| ·生物化学及分子生物学研究 | 第11页 |
| ·植物学研究 | 第11-12页 |
| ·多糖研究情况 | 第12-17页 |
| ·多糖的提取方法 | 第12-13页 |
| ·多糖的生物活性 | 第13-15页 |
| ·景天科多糖研究进展 | 第15-17页 |
| ·研究意义 | 第17页 |
| ·研究内容及主要创新点 | 第17-19页 |
| ·研究内容 | 第17页 |
| ·主要创新点 | 第17-19页 |
| 第2章 费菜多糖的提取 | 第19-51页 |
| ·材料与仪器 | 第19-20页 |
| ·材料 | 第19页 |
| ·主要试剂及来源 | 第19-20页 |
| ·主要仪器设备 | 第20页 |
| ·方法 | 第20-26页 |
| ·多糖含量测定及多糖得率计算 | 第20页 |
| ·费菜预处理 | 第20-21页 |
| ·费菜多糖热水提取法工艺优化 | 第21-22页 |
| ·酶法提取多糖工艺优化 | 第22-24页 |
| ·超声波法提取多糖工艺优化 | 第24-25页 |
| ·数据统计分析 | 第25-26页 |
| ·结果与分析 | 第26-48页 |
| ·葡萄糖标准曲线 | 第26页 |
| ·费菜多糖热水提取法工艺优化 | 第26-34页 |
| ·酶法提取费菜多糖工艺优化 | 第34-41页 |
| ·超声波法提取费菜多糖工艺优化 | 第41-48页 |
| ·小结 | 第48-51页 |
| 第3章 脱蛋白工艺优化 | 第51-67页 |
| ·材料与仪器 | 第51-52页 |
| ·材料 | 第51页 |
| ·主要试剂及来源 | 第51-52页 |
| ·主要仪器设备 | 第52页 |
| ·方法 | 第52-56页 |
| ·蛋白质标准曲线的绘制 | 第52-53页 |
| ·Sevag 法脱蛋白工艺优化 | 第53-54页 |
| ·酶法脱蛋白工艺优化 | 第54-55页 |
| ·三氯乙酸法脱蛋白工艺优化 | 第55-56页 |
| ·Sevag-酶结合法脱蛋白 | 第56页 |
| ·数据统计分析 | 第56页 |
| ·结果与分析 | 第56-66页 |
| ·蛋白质标准曲线 | 第56-57页 |
| ·Sevag 法脱蛋白工艺优化 | 第57-60页 |
| ·酶法脱蛋白工艺研究 | 第60-63页 |
| ·三氯乙酸法脱蛋白工艺优化 | 第63-66页 |
| ·Sevag-酶结合法脱蛋白 | 第66页 |
| ·小结 | 第66-67页 |
| 第4章 费菜多糖的分离纯化 | 第67-71页 |
| ·材料与仪器 | 第67-68页 |
| ·材料 | 第67页 |
| ·主要试剂及来源 | 第67页 |
| ·主要仪器设备 | 第67-68页 |
| ·方法 | 第68-69页 |
| ·DEAE-纤维素 52 柱层析 | 第68页 |
| ·葡聚糖凝胶 G-200 柱层析 | 第68-69页 |
| ·多糖纯度鉴定 | 第69页 |
| ·结果与分析 | 第69-71页 |
| ·费菜多糖 DEAE-Cellulose 色谱分离 | 第69-70页 |
| ·费菜多糖 Sephadex G-200 柱层析 | 第70页 |
| ·费菜多糖纯度鉴定 | 第70-71页 |
| 第5章 结论 | 第71-73页 |
| ·费菜多糖提取工艺探讨 | 第71页 |
| ·费菜多糖脱蛋白工艺的探讨 | 第71页 |
| ·费菜多糖的分离纯化 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 致谢 | 第79-81页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文及研究成果 | 第81页 |