| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 目录 | 第11-14页 |
| 英文缩写注释 | 第14-15页 |
| 第一章 MDS患者TET2基因突变和5-hmC含量检测及其与临床特征的关系 | 第15-42页 |
| ·前言 | 第15-18页 |
| ·材料 | 第18-22页 |
| ·研究对象 | 第18-20页 |
| ·主要试剂 | 第20-21页 |
| ·主要实验仪器 | 第21页 |
| ·主要引物 | 第21-22页 |
| ·方法 | 第22-27页 |
| ·骨髓单个核细胞的分离 | 第22-23页 |
| ·CD34+细胞免疫磁珠分选 | 第23页 |
| ·细胞基因组DNA提取 | 第23-24页 |
| ·DNA质量检测 | 第24页 |
| ·PCR扩增 | 第24-25页 |
| ·琼脂糖凝胶中PCR产物回收 | 第25页 |
| ·测序及分析 | 第25页 |
| ·基因组DNA中5-hmC含量测定 | 第25-26页 |
| ·统计学分析 | 第26-27页 |
| ·结果 | 第27-37页 |
| ·MDS患者BMMNC中TET2及IDH1/IDH2基因突变分析 | 第27-34页 |
| ·MDS患者BMMNC中5-hmC含量检测 | 第34-36页 |
| ·MDS患者中TET2基因突变与5-hmC的相关性分析 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-40页 |
| ·结论 | 第40-42页 |
| 第二章 MDS患者中TET2及5-hmC变化与P15及hMSH2基因甲基化程度的相关性研究 | 第42-70页 |
| ·前言 | 第42-45页 |
| ·材料 | 第45-47页 |
| ·主要试剂 | 第45页 |
| ·主要实验仪器 | 第45-46页 |
| ·主要引物 | 第46-47页 |
| ·方法 | 第47-52页 |
| ·甲基化特异性PCR | 第47-50页 |
| ·细胞总RNA提取 | 第50页 |
| ·逆转录cDNA的合成 | 第50页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第50-51页 |
| ·统计学分析 | 第51-52页 |
| ·结果 | 第52-65页 |
| ·MDS患者TET2基因甲基化状态及其mRNA表达分析 | 第52-55页 |
| ·MDS患者P15基因甲基化及其mRNA表达分析 | 第55-60页 |
| ·MDS患者hMSH2基因甲基化及其mRNA表达分析 | 第60-65页 |
| ·讨论 | 第65-69页 |
| ·结论 | 第69-70页 |
| 第三章 依据MDS IPSS-R分层分析TET2突变及5-hmC含量变化对MDS患者预后的影响 | 第70-77页 |
| ·前言 | 第70-71页 |
| ·方法 | 第71-72页 |
| ·随访 | 第71-72页 |
| ·统计学分析 | 第72页 |
| ·结果 | 第72-75页 |
| ·MDS患者IPSS分组与IPSS-R分组的比较 | 第72页 |
| ·Kaplan-Meier生存分析 | 第72-74页 |
| ·Cox比例风险模型分析 | 第74-75页 |
| ·讨论 | 第75-76页 |
| ·结论 | 第76-77页 |
| 总结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-90页 |
| 综述一 | 第90-116页 |
| 参考文献 | 第105-116页 |
| 综述二 | 第116-131页 |
| 参考文献 | 第124-131页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第131-132页 |
| 致谢 | 第132页 |
