| 缩略词表 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-12页 |
| ABSTRACT | 第12-17页 |
| 前言 | 第17-23页 |
| 第一部分 SECS的原代培养及鉴定 | 第23-36页 |
| 1 引言 | 第23-24页 |
| 2 实验材料 | 第24-25页 |
| ·实验动物 | 第24页 |
| ·实验试剂 | 第24页 |
| ·实验器材 | 第24-25页 |
| 3 实验方法 | 第25-30页 |
| ·SECS的分离和培养 | 第25-28页 |
| ·SECS鉴定 | 第28-29页 |
| ·体外培养状态下SECS生长规律观察 | 第29-30页 |
| 4 实验结果 | 第30-33页 |
| ·光学显微镜下的SECS | 第30-31页 |
| ·SECS的鉴定结果 | 第31-32页 |
| ·环境扫描电子显微镜下的SECS | 第32-33页 |
| 5 讨论 | 第33-35页 |
| ·SECS分离及培养的要点 | 第33-34页 |
| ·环境扫描电子显微镜的成像原理 | 第34-35页 |
| 6 结论 | 第35-36页 |
| 第二部分 不同浓度的黄芪多糖对SECS杨氏模量的影响 | 第36-44页 |
| 1 引言 | 第36页 |
| 2 实验材料 | 第36-37页 |
| ·实验试剂 | 第36页 |
| ·实验器材 | 第36-37页 |
| 3 实验方法 | 第37-40页 |
| ·黄芪多糖母液的配置 | 第37页 |
| ·单细胞微区精确力学测量装置的制作 | 第37-38页 |
| ·细胞准备 | 第38-39页 |
| ·杨氏模量的测量与计算 | 第39-40页 |
| ·数据分析 | 第40页 |
| 4 实验结果 | 第40-42页 |
| ·玻璃微球修饰的探针 | 第40页 |
| ·黄芪多糖对SECS杨氏模量的影响 | 第40-42页 |
| 5 讨论 | 第42-43页 |
| ·AFM的工作原理 | 第42-43页 |
| ·杨氏模量 | 第43页 |
| 6 结论 | 第43-44页 |
| 第三部分 不同浓度的黄芪多糖对SECS铺展及窗孔的影响 | 第44-52页 |
| 1 引言 | 第44页 |
| 2 实验材料 | 第44-45页 |
| ·实验试剂 | 第44-45页 |
| ·实验器材 | 第45页 |
| 3 实验方法 | 第45-46页 |
| ·黄芪多糖作用SECS 24小时 | 第45-46页 |
| ·SECS电镜标本的制备 | 第46页 |
| ·环境扫描电镜的观察 | 第46页 |
| ·数据统计分析 | 第46页 |
| 4 实验结果 | 第46-50页 |
| 5 讨论 | 第50-51页 |
| 6 结论 | 第51-52页 |
| 第四部分 黄芪多糖对SECS胞内NO合成的影响 | 第52-60页 |
| 1 引言 | 第52页 |
| 2 实验材料 | 第52-53页 |
| ·实验试剂 | 第52页 |
| ·实验器材 | 第52-53页 |
| 3 实验方法 | 第53-54页 |
| ·细胞准备 | 第53页 |
| ·原位安装NO探针 | 第53页 |
| ·荧光检测黄芪多糖对SECS合成NO的影响 | 第53-54页 |
| 4 实验结果 | 第54-57页 |
| 5 讨论 | 第57-58页 |
| NO检测方法和原理 | 第57-58页 |
| 6 结论 | 第58-60页 |
| 总结与展望 | 第60-63页 |
| 文献综述 | 第63-68页 |
| 参考文献 | 第68-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 个人简历 | 第77页 |