| 中英文缩写词对照表 | 第1-11页 |
| 中文摘要 | 第11-14页 |
| 英文摘要 | 第14-19页 |
| 实验一 高脂血症模型兔动脉与糖尿病模型大鼠肾脏肌球蛋白轻链激酶的表达和MAPK信号通路关系初步探讨 | 第19-46页 |
| 1 前言 | 第19-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-32页 |
| ·实验材料 | 第21-26页 |
| ·动物 | 第21页 |
| ·药物及试剂 | 第21-25页 |
| ·主要仪器设备 | 第25-26页 |
| ·实验内容与方法 | 第26-32页 |
| ·高脂血症兔模型的复制 | 第26页 |
| ·糖尿病大鼠模型的复制 | 第26页 |
| ·实验动物分组 | 第26页 |
| ·取材及标本处理 | 第26-27页 |
| ·石蜡切片HE 染色 | 第27-28页 |
| ·免疫组化 | 第28页 |
| ·Western blot | 第28-31页 |
| ·统计处理 | 第31-32页 |
| 3 结果 | 第32-37页 |
| ·高脂血症模型兔实验结果 | 第32-35页 |
| ·高脂血症模型兔血液中TG，CHO，HDL，LDL，VLDL 含量的变化 | 第32页 |
| ·高脂血症模型兔动脉中MLCK 表达的变化 | 第32-33页 |
| ·免疫组织化学检测高脂血症模型兔动脉MLCK 表达 | 第32-33页 |
| ·Western blot 检测高脂血症模型兔动脉MLCK 表达 | 第33页 |
| ·高脂血症模型兔动脉中MAPK 相关蛋白磷酸化变化 | 第33-35页 |
| ·DN 模型大鼠实验结果 | 第35-37页 |
| ·DN 模型大鼠血糖、体重、肾功能变化 | 第35-36页 |
| ·DN 模型大鼠HE 染色 | 第36页 |
| ·免疫组化检测MLCK 在肾脏中的表达 | 第36-37页 |
| ·Western blot 半定量分析肾脏表达MLCK | 第37页 |
| 4 讨论 | 第37-41页 |
| 5 结论 | 第41页 |
| 6 参考文献 | 第41-46页 |
| 实验二 褪黑素对动脉粥样硬化模型兔动脉肌球蛋白轻链激酶表达的影响及其分子机制 | 第46-95页 |
| 1 前言 | 第46-48页 |
| 2 材料与方法 | 第48-57页 |
| ·实验材料 | 第48-51页 |
| ·动物和细胞株 | 第48-49页 |
| ·药物及试剂 | 第49-51页 |
| ·仪器与设备 | 第51页 |
| ·实验内容与方法 | 第51-57页 |
| ·AS 兔模型的复制及分组 | 第51页 |
| ·HUVEC 细胞的培养 | 第51页 |
| ·动物标本取材及处理 | 第51页 |
| ·γ-32P-ATP 掺入检测MLCK 活性方法的建立及酶活性测定 | 第51-52页 |
| ·荧光法检测动脉内膜通透性 | 第52-53页 |
| ·氧化型低密度脂蛋白的制备 | 第53页 |
| ·MTT 法测细胞增殖 | 第53页 |
| ·免疫化学检测细胞MLCK 的表达 | 第53-54页 |
| ·Western blot 检测细胞MLCK 的表 | 第54页 |
| ·γ-32P-ATP 掺入检测细胞MLCK 活性 | 第54页 |
| ·RT-PCR 检测细胞MLCK 的转录 | 第54-57页 |
| ·统计处理 | 第57页 |
| 3 结果 | 第57-80页 |
| ·MLT对AS模型兔血清中TG、CHO、HDL、LDL含量的影响 | 第57-58页 |
| ·MLT对AS模型兔动脉内膜斑块形成的影响 | 第58-59页 |
| ·MLT对AS模型兔动脉中MLCK表达的影响 | 第59-60页 |
| ·MLT对AS模型兔动脉中MLCK活性的影响 | 第60-61页 |
| ·MLT 对AS 模型兔动脉内膜通透性的影响 | 第61页 |
| ·MLT 对AS 模型兔动脉occudin 表达的影响 | 第61-62页 |
| ·MLT 对AS 模型兔动脉中MAPK 相关蛋白磷酸化变化 | 第62-64页 |
| ·AS 模型兔动脉中ERK 磷酸化变化 | 第62-63页 |
| ·AS 模型兔动脉中P38 磷酸化变化 | 第63页 |
| ·AS 模型兔动脉中JNK 磷酸化变化 | 第63-64页 |
| ·oxLDL 对HUVEC 细胞增殖的影响 | 第64页 |
| ·oxLDL 对HUVEC MLCK 表达的影响 | 第64-65页 |
| ·MLT 对HUVEC MLCK 表达的影响 | 第65页 |
| ·MLT与PMA 对HUVEC MLCK 表达和活性及ERK 磷酸化的影响 | 第65-69页 |
| ·MLT 与PMA 对HUVEC 形态的影响 | 第65-66页 |
| ·MLT与PMA对HUVEC MLCK转录水平的影响 | 第66页 |
| ·MLT与PMA对HUVEC MLCK表达的影响 | 第66-68页 |
| ·MLT与PMA对HUVEC MLCK活性的影响 | 第68页 |
| ·MLT 与PMA 对HUVEC ERK 磷酸化水平的影响 | 第68-69页 |
| ·MLT 与PD98059 对HUVEC MLCK 表达活性及ERK 磷酸化的影响 | 第69-73页 |
| ·MLT 与PD98059 对HUVEC 形态的影响 | 第69页 |
| ·MLT 与PD98059 对HUVEC MLCK 转录水平的影响 | 第69-70页 |
| ·MLT 与PD98059 对HUVEC MLCK 表达的影响 | 第70-72页 |
| ·MLT 与PD98059 对HUVEC MLCK 活性的影响 | 第72页 |
| ·MLT 与PD98059 对HUVEC ERK 磷酸化水平的影响 | 第72-73页 |
| ·MLT 与58203580 对HUVEC MLCK 表达和活性及p38 磷酸化影响 | 第73-77页 |
| ·MLT 与58203580 对HUVEC 形态的影响 | 第73页 |
| ·MLT 与58203580 对HUVEC MLCK 转录水平的影响 | 第73-74页 |
| ·MLT 与58203580 对HUVEC MLCK 表达的影响 | 第74-75页 |
| ·MLT 与58203580 对HUVEC MLCK 活性的影响 | 第75-76页 |
| ·MLT 与58203580 对HUVEC p38 磷酸化水平的影响 | 第76-77页 |
| ·MLT与SP600125对HUVEC MLCK表达和活性及JNK磷酸化影响 | 第77-80页 |
| ·MLT 与SP600125 对HUVEC 形态的影响 | 第77页 |
| ·MLT与SP600125对HUVEC MLCK转录水平的影响 | 第77-78页 |
| ·MLT 与SP600125 对HUVEC MLCK 表达的影响 | 第78-79页 |
| ·MLT 与SP600125 对HUVEC MLCK 活性的影响 | 第79-80页 |
| ·MLT与SP600125对HUVEC JNK磷酸化水平的影响 | 第80页 |
| 4 讨论 | 第80-88页 |
| 5 结论 | 第88-89页 |
| 6 参考文献 | 第89-95页 |
| 对本课题的进一步设想 | 第95-96页 |
| 个人简历 | 第96-99页 |
| 致谢 | 第99-101页 |
| 综述 动脉粥样硬化发生机制及褪黑素的作用 | 第101-127页 |
