中文摘要 | 第1-11页 |
英文摘要 | 第11-13页 |
前言 | 第13-30页 |
1. 禽波氏杆菌病的研究现状 | 第13-22页 |
·病原学 | 第13-14页 |
·流行病学 | 第14-15页 |
·临诊症状和病理变化 | 第15-16页 |
·感染过程地发病机理 | 第16-17页 |
·禽波氏杆菌的致病性 | 第17-19页 |
·与禽波氏杆菌致病性相关基因 | 第19-20页 |
·禽波氏杆菌的诊断 | 第20-21页 |
·禽波氏杆菌病的防制 | 第21-22页 |
·经济意义及公共卫生意义 | 第22页 |
2 细菌外膜蛋白的研究现状 | 第22-29页 |
·OMP 的生理功能 | 第23-24页 |
·OMP 的免疫原性 | 第24-26页 |
·OMP 的致病作用 | 第26-28页 |
·外膜蛋白与血清型 | 第28-29页 |
3. 本研究的内容、目的及意义 | 第29-30页 |
试验一:间接 ELISA检测禽波氏杆菌抗体方法的建立及临床应用 | 第30-43页 |
1 材料与方法 | 第31-35页 |
·材料 | 第31-32页 |
·试验用菌株 | 第31页 |
·试验仪器 | 第31页 |
·主要试剂 | 第31-32页 |
·参考血清 | 第32页 |
·试验动物 | 第32页 |
·方法 | 第32-35页 |
·间接ELISA 抗原的制备 | 第32页 |
·禽波氏杆菌外膜蛋白免疫血清和阴性血清的制备 | 第32-33页 |
·间接ELISA 操作程序 | 第33页 |
·间接ELISA 最佳反应条件的选择 | 第33-34页 |
·特异性试验和敏感性试验 | 第34-35页 |
·ELISA 的重复性 | 第35页 |
·间接 ELISA 的临床应用 | 第35页 |
2. 结果 | 第35-40页 |
·间接ELISA 方法最佳反应条件的建立 | 第35-39页 |
·抗原包被和待检血清最适稀释倍数的测定 | 第35页 |
·酶标抗体稀释浓度的选择 | 第35页 |
·包被液的选择 | 第35页 |
·封闭液的选择 | 第35-37页 |
·抗原包被和封闭条件的选择 | 第37-38页 |
·稀释液的选择 | 第38页 |
·待检血清作用时间的选择 | 第38页 |
·酶标抗体作用时间的选择 | 第38页 |
·底物最佳反应时间的选择 | 第38页 |
·临界值确定 | 第38-39页 |
·特异性试验 | 第39页 |
·阻断性试验 | 第39页 |
·间接ELISA 和微量凝集试验敏感性比较实验 | 第39页 |
·重复性试验 | 第39页 |
·临床应用 | 第39-40页 |
3. 讨论与小结 | 第40-43页 |
试验二:禽波氏杆菌外膜蛋白的提取及其免疫原性的检测 | 第43-54页 |
1 材料与方法 | 第44-46页 |
·材料 | 第44-45页 |
·试验动物 | 第44页 |
·实验菌株 | 第44页 |
·培养基 | 第44页 |
·化学试剂 | 第44页 |
·电泳所用试剂 | 第44页 |
·兔抗鸡酶标抗体 | 第44页 |
·试验仪器 | 第44-45页 |
·方法 | 第45-46页 |
·禽波氏杆菌OMP 提取流程 | 第45页 |
·禽波氏杆菌OMP 蛋白含量测定 | 第45-46页 |
·禽波氏杆菌SDS-PAGE 电泳检测 | 第46页 |
·禽波氏杆菌外膜蛋白提取条件的优化 | 第46页 |
·兔抗禽波氏杆菌OMP 免疫血清的制备 | 第46页 |
·禽波氏杆菌 OMP 免疫保护效力的检测 | 第46页 |
2. 结果 | 第46-51页 |
·禽波氏杆菌 OMP 含量测定 | 第46页 |
·禽波氏杆菌 OMP 的SDS-PAGE 电泳 | 第46-47页 |
·禽波氏杆菌外膜蛋白提取条件的优化 | 第47-49页 |
·禽波氏杆菌 OMP 免疫保护效力的检测结果 | 第49-51页 |
·间接 ELISA 法检测抗体效价 | 第49-51页 |
·禽波氏杆菌 OMP 免疫保护抗体临界点的确定 | 第51页 |
3.小结与讨论 | 第51-54页 |
结论 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
个人简介 | 第66-67页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第67-68页 |
附图 | 第68-72页 |