| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 前言 | 第10-22页 |
| 1 食(药)用真菌深层发酵技术和多糖简介 | 第10-11页 |
| ·食(药)用真菌深层发酵技术简介 | 第10页 |
| ·多糖简介 | 第10-11页 |
| 2 食(药)用真菌多糖的生物活性 | 第11-14页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第11页 |
| ·免疫调节作用 | 第11-12页 |
| ·降血糖作用 | 第12页 |
| ·降血压、降血脂、抗血栓作用 | 第12页 |
| ·抗氧化活性 | 第12-13页 |
| ·抗病毒作用 | 第13页 |
| ·保肝健胃作用 | 第13页 |
| ·其它活性 | 第13-14页 |
| 3 食(药)用真菌多糖的化学结构与构效关系 | 第14-16页 |
| ·食(药)用真菌多糖的化学结构 | 第14-15页 |
| ·食(药)用真菌多糖的组成方式 | 第14页 |
| ·食(药)用真菌多糖的结构层次 | 第14-15页 |
| ·食(药)用真菌多糖的构效关系 | 第15-16页 |
| ·一级结构对生物活性的影响 | 第15-16页 |
| ·高级结构对生物活性的影响 | 第16页 |
| 4 食(药)用真菌多糖的研究方法 | 第16-18页 |
| ·食(药)用真菌多糖的提取 | 第16页 |
| ·食(药)用真菌多糖的分离纯化 | 第16-17页 |
| ·食(药)用真菌多糖的纯度鉴定 | 第17页 |
| ·食(药)用真菌多糖的分子量测定 | 第17-18页 |
| ·食(药)用真菌多糖的结构分析 | 第18页 |
| 5 鸡腿蘑的研究概况 | 第18-21页 |
| ·鸡腿蘑的营养价值 | 第18-19页 |
| ·鸡腿蘑的药用价值 | 第19-20页 |
| ·降血糖作用 | 第19页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第19-20页 |
| ·提高免疫活性 | 第20页 |
| ·降血脂作用 | 第20页 |
| ·抑菌作用 | 第20页 |
| ·鸡腿蘑深层发酵技术及其多糖的研究现状 | 第20-21页 |
| ·鸡腿蘑深层发酵技术的研究现状 | 第20-21页 |
| ·鸡腿蘑多糖的研究现状 | 第21页 |
| 6 本试验研究目的 | 第21-22页 |
| 材料方法 | 第22-31页 |
| 1 试验材料 | 第22-23页 |
| ·菌种 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22页 |
| ·培养基 | 第22-23页 |
| 2 主要仪器 | 第23-24页 |
| 3 试验方法 | 第24-31页 |
| ·鸡腿蘑深层发酵技术的研究 | 第24-27页 |
| ·菌种活化 | 第24页 |
| ·培养方法 | 第24页 |
| ·培养基原料的处理 | 第24页 |
| ·测定方法 | 第24-25页 |
| ·发酵培养基的筛选 | 第25-26页 |
| ·鸡腿蘑摇瓶发酵条件正交试验 | 第26页 |
| ·鸡腿蘑摇瓶发酵周期试验 | 第26-27页 |
| ·50L发酵罐试验 | 第27页 |
| ·鸡腿蘑多糖提取条件的优化 | 第27-28页 |
| ·鸡腿蘑发酵上清液胞外多糖提取条件的优化 | 第27页 |
| ·鸡腿蘑菌丝体胞内水溶性多糖提取条件正交试验 | 第27-28页 |
| ·多糖得率的计算 | 第28页 |
| ·鸡腿蘑菌丝体胞内粗多糖和发酵液胞外粗多糖的分离纯化 | 第28-30页 |
| ·鸡腿蘑菌丝体胞内多糖粗品和发酵液胞外多糖粗品的制备 | 第28-29页 |
| ·除蛋白—Sevag法 | 第29页 |
| ·透析脱盐 | 第29页 |
| ·浓缩 | 第29-30页 |
| ·DEAE-纤维素32柱层析 | 第30页 |
| ·Sephadex G-200凝胶柱层析 | 第30页 |
| ·数据分析 | 第30-31页 |
| 结果与分析 | 第31-48页 |
| 1 鸡腿蘑深层发酵技术的研究 | 第31-39页 |
| ·发酵培养基的筛选 | 第31-37页 |
| ·不同碳源对鸡腿蘑胞外多糖含量和生物量的影响 | 第31-32页 |
| ·不同氮源对鸡腿蘑胞外多糖含量和生物量的影响 | 第32-33页 |
| ·正交试验优化培养基碳氮源组成 | 第33-34页 |
| ·无机盐对鸡腿蘑胞外多糖含量和生物量的影响 | 第34-36页 |
| ·不同浓度玉米浆对鸡腿蘑胞外多糖含量和生物量的影响 | 第36-37页 |
| ·鸡腿蘑摇瓶发酵条件正交试验 | 第37-38页 |
| ·鸡腿蘑摇瓶发酵周期试验 | 第38-39页 |
| ·50L发酵罐试验 | 第39页 |
| 2 鸡腿蘑多糖提取条件的优化 | 第39-43页 |
| ·鸡腿蘑发酵上清液胞外多糖提取条件的优化 | 第39-41页 |
| ·提取温度对胞外多糖得率的影响 | 第39-40页 |
| ·提取时间对胞外多糖得率的影响 | 第40页 |
| ·不同乙醇加入量对胞外多糖得率的影响 | 第40-41页 |
| ·不同pH对胞外多糖得率的影响 | 第41页 |
| ·鸡腿蘑菌丝体胞内水溶性多糖提取条件正交试验 | 第41-43页 |
| 3 鸡腿蘑菌丝体胞内粗多糖和发酵液胞外粗多糖的分离纯化 | 第43-48页 |
| ·Sevag法除蛋白条件的正交试验 | 第43-44页 |
| ·鸡腿蘑菌丝体胞内粗多糖和发酵液胞外粗多糖的分级分离 | 第44-48页 |
| ·DEAE-纤维素32柱层析 | 第44-46页 |
| ·Sephadex G-200凝胶柱层析 | 第46-48页 |
| 小结与讨论 | 第48-51页 |
| 1.鸡腿蘑发酵培养基的筛选 | 第48页 |
| 2.鸡腿蘑摇瓶发酵条件的优化 | 第48页 |
| 3.鸡腿蘑摇瓶发酵周期试验 | 第48页 |
| ·L发酵罐试验 | 第48页 |
| 5.鸡腿蘑发酵上清液胞外多糖提取条件的优化 | 第48-49页 |
| 6.鸡腿蘑菌丝体胞内水溶性多糖提取正交试验 | 第49页 |
| 7.Sevag法去蛋白条件的正交试验 | 第49页 |
| 8.鸡腿蘑胞内、胞外多糖的分级分离 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
