| 第一章 引言 | 第1-12页 |
| 1 国内外亚麻生物技术的研究概况 | 第8-10页 |
| ·花药培养与单倍体育种 | 第8-9页 |
| ·组织再生体系的建立 | 第9页 |
| ·原生质体培养 | 第9-10页 |
| ·转基因技术的研究 | 第10页 |
| 2 RAPD 分子标记的应用 | 第10-11页 |
| ·RAPD 分子标记的原理 | 第10-11页 |
| ·RAPD 分子标记在目标基因中的应用 | 第11页 |
| 3 本研究的目的意义 | 第11-12页 |
| 第二章 RAPD 标记 | 第12-21页 |
| 1 材料和方法 | 第12-15页 |
| ·实验材料 | 第12页 |
| ·实验方法 | 第12-15页 |
| ·仪器设备 | 第12页 |
| ·实验试剂 | 第12页 |
| ·主要试剂的配制 | 第12-13页 |
| ·亚麻总 DNA 的提取 | 第13-14页 |
| ·植物基因组 DNA 提取试剂盒(离心柱型)进行亚麻总 DNA 的提取 | 第13-14页 |
| ·常规方法对亚麻总 DNA 的提取 | 第14页 |
| ·RAPD 扩增反应 | 第14-15页 |
| ·RAPD 扩增反应条件的优化 | 第14页 |
| ·RAPD 标记及其标记产物的琼脂糖凝胶电泳检测 | 第14-15页 |
| 2 结果与分析 | 第15-20页 |
| ·提取的亚麻总 DNA 的浓度与质量检测分析 | 第15-16页 |
| ·亚麻总 DNA 的琼脂糖凝胶电泳分析 | 第15-16页 |
| ·亚麻总 DNA 紫外分光光度计检测 | 第16页 |
| ·RAPD 反应分析 | 第16-20页 |
| ·RAPD 反应条件优化的分析 | 第16-19页 |
| ·HotStart Tag DNA 聚合酶浓度分析 | 第16-17页 |
| ·退火温度的分析 | 第17页 |
| ·dNTP 浓度的分析 | 第17-18页 |
| ·模板 DNA 浓度对 RAPD 反应的影响 | 第18-19页 |
| ·RAPD 扩增反应条件优化的结果 | 第19页 |
| ·RAPD 标记产物的琼脂糖凝胶电泳结果分析 | 第19-20页 |
| 3 讨论 | 第20-21页 |
| ·RAPD 标记的重复性评价 | 第20-21页 |
| ·RAPD 标记的可靠性评价 | 第21页 |
| 第三章 RAPD 标记片段的克隆及序列分析 | 第21-33页 |
| 1 方法 | 第21-25页 |
| ·实验方法 | 第21-25页 |
| ·仪器设备 | 第21页 |
| ·实验试剂 | 第21页 |
| ·主要试剂的配制 | 第21-22页 |
| ·RAPD 标记片段的回收纯化 | 第22-23页 |
| ·DNA 的克隆 | 第23-25页 |
| ·连接反应体系 | 第23页 |
| ·转化 | 第23-24页 |
| ·转化平板的制备 | 第23页 |
| ·热激转化 | 第23-24页 |
| ·蓝白菌落筛选与划线培养 | 第24页 |
| ·重组质粒中 S62、S135 和 G06 差异片段的检测 | 第24-25页 |
| ·重组质粒中 S62、S135 和 G06 差异片段的琼脂糖凝胶电泳检测(kieser 法) | 第24页 |
| ·重组质粒中 S62、S135 和 G06 差异片段的 PCR 检测 | 第24-25页 |
| ·重组质粒中 S62、S135 和 G06 差异片段的序列测定 | 第25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-32页 |
| ·回收的 DNA 片段的琼脂糖凝胶电泳检测分析 | 第25页 |
| ·回收的 DNA 片段紫外分光光度计检测 | 第25-26页 |
| ·重组质粒中 S62、S135 和 G06 差异片段的琼脂糖凝胶电泳分析 | 第26-27页 |
| ·重组质粒中 S62、S135 和 G06 差异片段的 PCR 检测结果分析 | 第27-28页 |
| ·差异片段 S62-500、S135-350 和 G06-650 的测序结果分析 | 第28-32页 |
| ·差异片段 S62-500 的序列分析 | 第29-30页 |
| ·差异片段 S135-350 的序列分析 | 第30-31页 |
| ·差异片段 G06-650 的序列分析 | 第31-32页 |
| 3 讨论 | 第32-33页 |
| 第四章 结论 | 第33-35页 |
| 致谢 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-41页 |
| 附录 | 第41-44页 |
| 作者简介 | 第44页 |
