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日本结楼草(Zoysia japonica Steud.)植株再生体系建立与DREB1A基因转化研究

独创性声明第1-3页
摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
目录第7-12页
缩写词第12-14页
第一章 综述第14-38页
 1.1 转基因技术在草坪草育种上的应用第14-30页
  1.1.1 离体培养及植株再生体系的建立第14-17页
   1.1.1.1 胚性愈伤组织、细胞悬浮系与原生质体培养第14-16页
   1.1.1.2 植株再生第16-17页
  1.1.2 草坪草遗传转化体系的建立第17-21页
   1.1.2.1 原生质体转化方法第17-18页
   1.1.2.2 不依赖于原生质体的转化方法第18-21页
   1.1.2.3 其它转化方法第21页
  1.1.3 表达载体的构建第21页
  1.1.4 转化体筛选与转基因植株的鉴定第21-23页
   1.1.4.1 利用标记基因筛选第21-22页
   1.1.4.2 生长试验第22页
   1.1.4.3 遗传鉴定第22-23页
  1.1.5 草坪草育种中应用转基因技术存在的问题第23-25页
   1.1.5.1 基因型的限制第23页
   1.1.5.2 组织培养过程中变异的发生第23-24页
   1.1.5.3 基因转化体系的完善与扩展第24页
   1.1.5.4 外源基因的高效表达第24-25页
   1.1.5.5 标记基因的去除第25页
   1.1.5.6 转基因草坪草向大田释放的风险性第25页
  1.1.6 转基因技术在草坪草育种中应用的发展前景第25-30页
 1.2 日本结缕草基因工程研究进展第30-33页
  1.2.1 日本结缕草离体植株再生第30-31页
  1.2.2 日本结缕草的遗传转化第31-32页
   1.2.2.1 基因转化第31-32页
   1.2.2.2 基因表达第32页
  1.2.3 应用转基因技术培育日本结缕草新品种的育种方向第32-33页
   1.2.3.1 延长绿期第32-33页
   1.2.3.2 提高抗性第33页
   1.2.3.3 抗除草剂第33页
 1.3 DREB转录因子及其在植物中的转化第33-36页
  1.3.1 渗透胁迫应答基因第33-34页
  1.3.2 DREB转录因子第34-35页
  1.3.3 DREB转录因子在植物中的转化第35-36页
 1.4 本研究意义、目标和内容第36-38页
  1.4.1 选题背景与研究意义第36页
  1.4.2 研究目标第36-37页
  1.4.3 主要研究内容第37-38页
第二章 日本结缕草植株再生体系的建立第38-62页
 2.1 材料与方法第38-41页
  2.1.1 材料第38-39页
   2.1.1.1 植物材料第38页
   2.1.1.2 培养基第38-39页
  2.1.2 种子的消毒第39页
  2.1.3 愈伤组织的诱导与继代第39页
  2.1.4 愈伤组织生长量的测定第39页
  2.1.5 愈伤组织的分化与植株再生第39页
  2.1.6 试验设计第39-41页
  2.1.7 数据统计第41页
 2.2 结果与分析第41-59页
  2.2.1 以日本结缕草种子为外植体诱导愈伤组织第41-54页
   2.2.1.1 预处理对日本结缕草成熟种子愈伤诱导率的影响第41-43页
   2.2.1.2 不同因素对日本结缕草种子诱导愈伤组织的影响第43-52页
   2.2.1.3 日本结缕草种子诱导愈伤的多因素正交实验第52-54页
  2.2.2 以无菌实生苗各部分为外植体诱导愈伤组织的正交实验第54-57页
   2.2.2.1 以胚轴、根段及幼芽诱导愈伤组织的正交实验第54-56页
   2.2.2.2 以芽尖诱导愈伤组织的正交实验第56-57页
  2.2.3 愈伤组织生长曲线的测定第57-58页
  2.2.4 不同培养基对植株再生的影响第58-59页
 2.3 结论与讨论第59-62页
  2.3.1 外植体的选择第59-60页
  2.3.2 基因型对愈伤组织诱导的影响第60页
  2.3.3 激素的协同作用对日本结缕草愈伤组织诱导的影响第60-61页
  2.3.4 愈伤组织继代与胚性的维持第61页
  2.3.5 植株再生第61-62页
第三章 DREB1A基因导入日本结缕草的研究第62-90页
 3.1 材料与方法第62-68页
  3.1.1 材料第62-63页
   3.1.1.1 受体植物材料第62页
   3.1.1.2 细菌和质粒第62-63页
  3.1.2 培养基第63页
   3.1.2.1 细菌培养基第63页
   3.1.2.2 受体材料培养基第63页
   3.1.2.3 基因枪转化用培养基第63页
   3.1.2.4 农杆菌介导转化用培养基第63页
  3.1.3 质粒DNA的制备第63-65页
   3.1.3.1 大肠杆菌受体细菌的培养第63-64页
   3.1.3.2 大肠杆菌感受态细胞的制备第64页
   3.1.3.3 质粒的转化第64页
   3.1.3.4 质粒DNA的提取第64-65页
  3.1.4 重组质粒由大肠杆菌向农杆菌中转移第65页
  3.1.5 基因枪转化第65-67页
   3.1.5.1 金粉DNA复合体的制备第65页
   3.1.5.2 受体材料的处理第65页
   3.1.5.3 受体材料的轰击第65-66页
   3.1.5.4 转化子的筛选第66页
   3.1.5.5 GUS表达的检测第66-67页
  3.1.6 农杆菌介导转化第67-68页
   3.1.6.1 农杆菌的培养与活化第67页
   3.1.6.2 农杆菌介导的遗传转化第67-68页
   3.1.6.3 抑菌剂对农杆菌和外植体生长的影响第68页
 3.2 结果与分析第68-84页
  3.2.1 不同因素对日本结缕草基因枪转化效率的影响第68-76页
   3.2.1.1 筛选压的确定第68-70页
   3.2.1.2 基因枪转化参数的多因素正交实验第70-71页
   3.2.1.3 金粉直径对转化效率的影响第71-72页
   3.2.1.4 渗透处理对转化效率的影响第72-73页
   3.2.1.5 预培养对转化效率的影响第73页
   3.2.1.6 延迟筛选对转化效率的影响第73-74页
   3.2.1.7 受体状态对转化效率的影响第74-75页
   3.2.1.8 日本结缕草不同品种间转化效率的差异第75-76页
  3.2.2 不同因素对日本结缕草农杆菌介导转化效率的影响第76-83页
   3.2.2.1 抑菌剂浓度的确定第76-78页
   3.2.2.2 菌液浓度对转化效率的影响第78-79页
   3.2.2.3 侵染时间对转化效率的影响第79页
   3.2.2.4 共培养时间对转化效率的影响第79-80页
   3.2.2.5 预培养对转化效率的影响第80-81页
   3.2.2.6 乙酰丁香酮浓度对转化效率的影响第81-82页
   3.2.2.7 真空处理对转化效率的影响第82-83页
  3.2.3 基因枪与农杆菌转化效率的差异第83-84页
 3.3 结论与讨论第84-90页
  3.3.1 日本结缕草遗传转化体系第84-86页
  3.3.2 受体对转化效率的影响第86页
  3.3.3 筛选方案对转化效率的影响第86-87页
  3.3.4 转化方法对转化效率的影响第87-89页
  3.3.5 DREB1A基因的导入对日本结缕草生长的影响第89-90页
第四章 抗性植株的检测第90-96页
 4.1 材料与方法第90-93页
  4.1.1 植物材料第90页
  4.1.2 组织化学染色第90页
  4.1.3 抗性植株的分子检测第90-93页
   4.1.3.1 植物DNA的提取第90-91页
   4.1.3.2 抗性植株的PCR分析第91页
   4.1.3.3 抗性植株的Southern印迹杂交第91-93页
 4.2 结果与分析第93-94页
  4.2.1 GUS检测第93页
  4.2.2 抗性植株的分子检测第93-94页
 4.3 结论与讨论第94-96页
第五章 结论第96-98页
参考文献第98-110页
附图第110-112页
个人简介第112-113页
导师简介第113-114页
获得成果目录清单第114-115页
致谢第115页

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