| 中文摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 综述 | 第11-14页 |
| 材料与方法 | 第14-21页 |
| 1 实验材料 | 第14-15页 |
| 1．1 RNA和cDNA样品 | 第14页 |
| 1．2 DNA样品 | 第14页 |
| 1．3 培养基 工具酶和试剂盒 | 第14页 |
| 1．4 菌株 | 第14-15页 |
| 1．5 主要生化试剂的配制 | 第15页 |
| 1．6 主要仪器设备 | 第15页 |
| 1．7 主要分子生物学软件 | 第15页 |
| 2 方法 | 第15-21页 |
| 2．1 猪 INSIG家族和 SCAP基因的分离 | 第15-16页 |
| 2．2 DNA序列同源性检索鉴定 | 第16页 |
| 2．3 猪 INSIG和 SCAP基因的染色体定 | 第16-18页 |
| 2．4 用 Rapid Amplification of cDNA Ends (RACE) 方法获取基因的全长cDNA及序列分析 | 第18-20页 |
| 2．5 用半巢式PCR扩增方法获取INSIG2拟基因的5’侧翼序列 | 第20页 |
| 2．6 猪INSIG家族和SCAP基因的组织表达谱分析 | 第20-21页 |
| 结果与分析 | 第21-48页 |
| 1 INSIG1基因cDNA片断的分离、序列分析与鉴定 | 第21-27页 |
| 1．1 猪INSIG1及其差异剪接体的部分cDNA的特异扩增 | 第21-23页 |
| 1．2 猪INSIG1氨基酸序列分析 | 第23-24页 |
| 1．3 INSIG1差异剪接体在其他物种中的检测 | 第24-25页 |
| 1．4 INSIG1内含子序列的扩增结果 | 第25-26页 |
| 1．5 猪 INSIG1及其差异剪接体的组织表达谱 | 第26-27页 |
| 2 INSIG2基因cDNA片断的分离、序列分析与鉴定 | 第27-32页 |
| 2．1 INSIG2的部分cDNA的特异扩增及其 RACE扩增 | 第27页 |
| 2．2 INSIG2的全长编码区的分析鉴定 | 第27-28页 |
| 2．3 猪 INSIG2氨基酸序列分析 | 第28-29页 |
| 2．4 INSIG2内含子的扩增结果及其序列分析 | 第29-31页 |
| 2．5 猪 INSIG2的组织表达谱 | 第31-32页 |
| 3 INSIG2拟基因的鉴定 | 第32-36页 |
| 3．1 INSIG2拟基因的扩增及其序列分析 | 第32-34页 |
| 3．2 INSIG2拟基因在其他物种中的检测 | 第34页 |
| 3．3 INSIG2拟基因的表达分析 | 第34页 |
| 3．4 INSIG2拟基因5’端上游序列的获得 | 第34-36页 |
| 4 猪SCAP全长cDNA和基因组序列的获得及其差异剪接体的分离鉴定 | 第36-46页 |
| 4．1 SCAP的部分cDNA的特异扩增及其 RACE扩增结果 | 第36-37页 |
| 4．2 猪 SCAP的全长cDNA的分析鉴定 | 第37-39页 |
| 4．3 猪 SCAP氨基酸序列分析 | 第39-41页 |
| 4．4 猪 SCAP内含子序列扩增及其基因组结构分析 | 第41-43页 |
| 4．5 人和猪 SCAP基因组结构的比较分析 | 第43-44页 |
| 4．6 猪 SCAP差异型剪接体的分离鉴定 | 第44-45页 |
| 4．7 SCAP差异剪接体在其他物种中的检测 | 第45-46页 |
| 5 INSIG1、INSIG2、INSIG2拟基因和 SCAP的染色体定位 | 第46-48页 |
| 讨论 | 第48-51页 |
| 小结 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 研究生在读期间论文发表情况 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 附录 | 第61-64页 |
| 附录1 猪 SCAP基因组序列 | 第61-64页 |
| 附录2 部分本研究获得的基因序列及其 GENBANK序列注册号 | 第64页 |
