| 中文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 第一部分 前言 | 第14-19页 |
| 1 多糖的定义与结构 | 第14-17页 |
| 2 真菌多糖的概述 | 第17-18页 |
| 3 红曲多糖的概述 | 第18页 |
| 4 本论文的研究目的和意义 | 第18-19页 |
| 第二部分 研究内容 | 第19-56页 |
| 研究路线 | 第19-20页 |
| 1 红曲多糖的毒理性及免疫性研究 | 第20-28页 |
| 1．1 引言 | 第20-21页 |
| 1．2 材料与方法 | 第21-22页 |
| 1．2．1 试验动物 | 第21页 |
| 1．2．2 主要仪器 | 第21页 |
| 1．2．3 主要药品 | 第21页 |
| 1．2．4 试验动物分组进行毒理试验 | 第21页 |
| 1．2．5 迟发性变态反应(DTH试验) | 第21-22页 |
| 1．2．6 三氯甲烷肝损伤 | 第22页 |
| 1．2．7 碳粒廓清试验 | 第22页 |
| 1．2．8 耐缺氧能力试验 | 第22页 |
| 1．2．9 游泳试验 | 第22页 |
| 1．3 结果与讨论 | 第22-27页 |
| 1．3．1 红曲多糖对小鼠体重的影响 | 第22-23页 |
| 1．3．2 红曲多糖对小鼠肝肾及脏体指数的影响 | 第23页 |
| 1．3．3 红曲多糖对心肺脾及其脏体指数影响 | 第23-24页 |
| 1．3．4 红曲多糖对小鼠SGPT，SGOT，血糖，和总蛋白含量的影响 | 第24页 |
| 1．3．5 迟发性变态反应(DTH试验)结果 | 第24-25页 |
| 1．3．6 三氯甲烷肝损伤试验结果 | 第25页 |
| 1．3．7 碳粒廓清试验结果 | 第25页 |
| 1．3．8 耐缺氧能力试验结果 | 第25-26页 |
| 1．3．9 游泳试验结果 | 第26页 |
| 1．3．10 毒理试验结果分析 | 第26页 |
| 1．3．11 免疫试验结果分析 | 第26-27页 |
| 1．4 毒理及免疫试验小结 | 第27-28页 |
| 2 红曲多糖高产菌株的诱变筛选与培养基优化研究 | 第28-37页 |
| 2．1 引言 | 第28页 |
| 2．2 材料方法 | 第28-32页 |
| 2．2．1 菌种及来源 | 第28页 |
| 2．2．2 各级菌种培养基配方 | 第28-29页 |
| 2．2．3 主要仪器设备 | 第29页 |
| 2．2．4 斜面培养基的研制 | 第29页 |
| 2．2．5 深层发酵菌种的驯化筛选 | 第29-30页 |
| 2．2．5．1 划线培养 | 第29页 |
| 2．2．5．2 诱变前孢子悬液的制备 | 第29页 |
| 2．2．5．3 孢子悬浮液计数方法 | 第29-30页 |
| 2．2．5．4 紫外诱变 | 第30页 |
| 2．2．5．5 大量诱变、筛选 | 第30页 |
| 2．2．5．6 摇瓶发酵培养 | 第30页 |
| 2．2．5．7 醇沉法获得粗多糖 | 第30页 |
| 2．2．5．8 筛选试验的工艺流程图 | 第30页 |
| 2．2．6 菌种深层发酵工艺的研究 | 第30-32页 |
| 2．2．6．1 培养方法 | 第30-31页 |
| 2．2．6．2 无机元素的影响 | 第31页 |
| 2．2．6．3 发酵优化条件检验 | 第31页 |
| 2．2．6．4 生物量的测定 | 第31页 |
| 2．2．6．5 多糖醇沉 | 第31页 |
| 2．2．6．6 离心、干燥 | 第31-32页 |
| 2．2．6．7 试验路线 | 第32页 |
| 2．3 结果与讨论 | 第32-36页 |
| 2．3．1 红曲霉斜面培养基试验结果 | 第32页 |
| 2．3．2 紫外诱变试验结果 | 第32-34页 |
| 2．3．2．1 不同时间剂量紫外线对红曲霉AS 3.4701菌株进行诱变处理 | 第32-33页 |
| 2．3．2．2 紫外线最佳诱变剂量的确定 | 第33页 |
| 2．3．2．3 菌株遗传稳定性的确定 | 第33页 |
| 2．3．2．4 试验分析 | 第33-34页 |
| 2．3．3 深层发酵培养基优化结果 | 第34-36页 |
| 2．3．3．1 正交试验结果 | 第34-35页 |
| 2．3．3．2 方差分析结果 | 第35页 |
| 2．3．3．3 无机元素的影响试验结果 | 第35-36页 |
| 2．3．3．4 发酵优化条件检验 | 第36页 |
| 2．4 紫外诱变和发酵条件优化试验小结 | 第36-37页 |
| 3 红曲多糖的提取、纯化及理化性质研究 | 第37-56页 |
| 3．1 引言 | 第37-38页 |
| 3．2 材料与方法 | 第38-44页 |
| 3．2．1 红曲多糖的提取工艺 | 第38页 |
| 3．2．2 摇瓶培养工艺 | 第38页 |
| 3．2．3 醇沉操作 | 第38页 |
| 3．2．4 提取条件优化的正交试验因素选择 | 第38页 |
| 3．2．5 多糖含量的测定 | 第38-39页 |
| 3．2．6 可溶性蛋白含量的测定 | 第39-40页 |
| 3．2．7 提取液超滤 | 第40页 |
| 3．2．8 杂蛋白的去除 | 第40页 |
| 3．2．9 透析脱盐及小分子杂质 | 第40页 |
| 3．2．10 DEAE-纤维素柱层析 | 第40页 |
| 3．2．11 Sephadex G-200柱层析 | 第40页 |
| 3．2．12 纸层析 | 第40-41页 |
| 3．2．13 双向薄层层析 | 第41-42页 |
| 3．2．13．1 红曲多糖水解 | 第41页 |
| 3．2．13．2 层析试剂 | 第41页 |
| 3．2．13．3 层析制板 | 第41页 |
| 3．2．13．4 配单糖溶液 | 第41页 |
| 3．2．13．5 显色剂 | 第41页 |
| 3．2．13．6 层析液的研究 | 第41-42页 |
| 3．2．13．7 层析展开 | 第42页 |
| 3．2．14 分子量测定 | 第42页 |
| 3．2．15 红外光谱分析 | 第42-43页 |
| 3．2．16 蒽酮反应 | 第43页 |
| 3．2．17 溶液粘度 | 第43页 |
| 3．2．18 碘液反应 | 第43页 |
| 3．2．19 比旋光度的测定 | 第43-44页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第44-54页 |
| 3．3．1 提取条件优化正交试验结果 | 第44-45页 |
| 3．3．2 方差分析结果 | 第45页 |
| 3．3．3 提取优化条件检验 | 第45页 |
| 3．3．4 提取条件优化结果 | 第45-46页 |
| 3．3．5 多糖含量测定结果 | 第46-47页 |
| 3．3．6 可溶性蛋白的测定结果 | 第47-49页 |
| 3．3．7 滤过程对多糖提取率的影响 | 第49页 |
| 3．3．8 除蛋白方法对多糖提取率的影响 | 第49页 |
| 3．3．9 柱层析对红曲多糖纯化的影响 | 第49-50页 |
| 3．3．10 红曲多糖的溶解性分析 | 第50页 |
| 3．3．11 多糖纯度的鉴定结果 | 第50-51页 |
| 3．3．12 多糖的物理性质 | 第51页 |
| 3．3．13 多糖的单糖组成分析结果 | 第51-53页 |
| 3．3．14 多糖的分子量确定结果 | 第53-54页 |
| 3．3．15 多糖的光谱分析结果 | 第54页 |
| 3．4 提取纯化及理化性质研究小结 | 第54-56页 |
| 第三部分 结论 | 第56-57页 |
| 1 试验结果 | 第56页 |
| 2 试验的不足和后续的研究方向 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 致谢 | 第61页 |