| 第一章 前言 | 第1-13页 |
| ·手性化合物制备的意义与方法 | 第8-9页 |
| ·外消旋体的生物拆分的一些影响因素 | 第9-10页 |
| ·制备(S)-2-甲基-1-丁醇的意义 | 第10页 |
| ·脂肪酶催化拆分外消旋2-甲基-1-丁醇 | 第10-12页 |
| ·脂肪酶拆分外消旋体的发展概述 | 第10-11页 |
| ·关于用猪胰脂肪酶催化拆分外消旋2-甲基-1-丁醇 | 第11-12页 |
| ·本文的主要任务 | 第12-13页 |
| 第二章 猪胰脂肪酶催化拆分外消旋2-甲基-1-丁醇的酯交换反应 | 第13-28页 |
| ·产品的分离提纯 | 第13-14页 |
| ·真空精馏的实验装置 | 第13-14页 |
| ·真空精馏条件 | 第14页 |
| ·实验的分析方法和设备 | 第14-20页 |
| ·高效液相色谱 | 第14-17页 |
| ·气相色谱仪 | 第17-18页 |
| ·旋光仪 | 第18-20页 |
| ·关于酶催化拆分外消旋2-甲基-1-丁醇存在的问题 | 第20-21页 |
| ·猪胰脂肪酶催化拆分旋光选择性的研究 | 第21-24页 |
| ·游离猪胰脂肪酶催化拆分旋光选择性的研究 | 第21-22页 |
| ·固定化猪胰脂肪酶催化拆分旋光选择性的研究 | 第22-23页 |
| ·不同厂家的猪胰脂肪酶催化拆分旋光选择性的研究 | 第23-24页 |
| ·关于使酶催化光学选择性转变的探索 | 第24-27页 |
| ·使酶活力降低以改变酶的光学选择性的探索 | 第24-26页 |
| ·使酶活力提高以改变酶的光学选择性的探索 | 第26-27页 |
| ·本章小结 | 第27-28页 |
| 第三章 酶的分离纯化 | 第28-50页 |
| ·酶分离纯化的目的和意义 | 第28页 |
| ·酶分离纯化的方法 | 第28页 |
| ·盐析 | 第28-33页 |
| ·盐析原理 | 第28-29页 |
| ·盐析所用盐类的确定 | 第29页 |
| ·脱盐 | 第29页 |
| ·实验部分 | 第29-31页 |
| ·实验数据 | 第31-33页 |
| ·实验结论 | 第33页 |
| ·电泳 | 第33-44页 |
| ·常规聚丙烯酰胺电泳原理 | 第33-34页 |
| ·凝胶电泳的支持介质 | 第34页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶的形成和结构 | 第34-35页 |
| ·影响电泳的环境因素 | 第35页 |
| ·不连续垂直板状凝胶电泳相关名词 | 第35-36页 |
| ·不连续电泳的特点 | 第36页 |
| ·电泳条件的选择 | 第36-37页 |
| ·实验部分 | 第37-39页 |
| ·实验数据及结果分析 | 第39-41页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺电泳 | 第41-43页 |
| ·结论 | 第43-44页 |
| ·柱层析 | 第44-48页 |
| ·凝胶过滤层析原理 | 第44页 |
| ·凝胶过滤的凝胶选择 | 第44-45页 |
| ·柱层析的基本过程与要求 | 第45-46页 |
| ·实验部分 | 第46-48页 |
| ·本章结论 | 第48-50页 |
| 第四章 (S)-丁酸异戊酯的水解 | 第50-57页 |
| ·水解体系的确定 | 第50页 |
| ·实验部分 | 第50-52页 |
| ·实验试剂和器材 | 第50页 |
| ·实验具体步骤 | 第50-51页 |
| ·实验数据 | 第51页 |
| ·实验结论 | 第51-52页 |
| ·不同厂家的PPL 酶拆分反应后的(S)-丁酸异戊酯水解的比较 | 第52页 |
| ·(S)-2-甲基-1-丁醇光学纯度的微量分析 | 第52-57页 |
| ·(S)-2-甲基-1-丁醇光学纯度的微量分析的意义 | 第52-53页 |
| ·仪器及试剂 | 第53页 |
| ·(S)-2-甲基-1-丁醇标准光学纯度旋光图谱 | 第53-54页 |
| ·(S)-2-甲基-1-丁醇标准光学纯度曲线 | 第54-55页 |
| ·少量(S)-2-甲基-1-丁醇光学纯度的确定 | 第55-57页 |
| 第五章 结论 | 第57-59页 |
| 附录 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-64页 |
| 在读期间发表的论文 | 第64-65页 |
| 声明 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
