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根霉脂肪酶催化降解天然高分子壳聚糖研究

中文摘要第1-9页
英文摘要第9-12页
第一章 壳聚糖降解研究进展(综述)第12-23页
 1.1 壳聚糖的结构与性质第12-14页
 1.2 壳聚糖的降解方法第14-20页
  1.2.1 化学降解法第14-15页
   1.2.1.1 酸水解法第14-15页
   1.2.1.2 氧化降解法第15页
  1.2.2 物理降解法第15-16页
   1.2.2.1 γ射线辐射降解第15-16页
   1.2.2.2 超声波降解第16页
  1.2.3 酶催化降解法第16-20页
   1.2.3.1 专一性酶催化降解壳聚糖第17页
   1.2.3.2 非专一性酶催化降解壳聚糖第17-20页
 1.3 展望第20-21页
 1.4 立题依据和研究设想第21-23页
第二章 根霉菌固态发酵生产脂肪酶第23-34页
 2.1 引言第23页
 2.2 实验方法第23-25页
  2.2.1 材料第23-24页
  2.2.2 方法第24-25页
   2.2.2.1 孢子悬液的制备第24页
   2.2.2.2 根霉菌的固态培养第24页
   2.2.2.3 脂肪酶粗酶液的制备第24页
   2.2.2.4 纯酶粉制备第24-25页
   2.2.2.5 脂肪酶活力测定第25页
   2.2.2.6 还原糖含量测定第25页
 2.3 结果与讨论第25-33页
  2.3.1 根霉菌产脂肪酶固态基础培养基的选择第25-26页
  2.3.2 碳源对产脂肪酶的影响第26-27页
  2.3.3 氮源对根霉菌的产酶影响第27-29页
  2.3.4 接种量对根霉菌的产酶影响第29页
  2.3.5 培养基含水量对根霉菌的产酶影响第29-31页
  2.3.6 温度对根霉菌的产酶影响第31页
  2.3.7 Ca~(2+)、Mg~(2+)离子对根霉菌产酶的影响第31-32页
  2.3.8 根霉菌的固态培养产酶曲线第32-33页
 2.4 小结第33-34页
第三章 根霉菌脂肪酶降解壳聚糖研究第34-44页
 3.1 引言第34-35页
 3.2 实验部分第35-36页
  3.2.1 材料第35页
  3.2.2 方法第35-36页
   3.2.2.1 粘度的测定第35页
   3.2.2.2 粘均分子量测定第35页
   3.2.2.3 壳聚糖脱乙酰度的测定第35-36页
   3.2.2.4 脂肪酶活力测定第36页
   3.2.2.5 还原糖含量测定第36页
   3.2.2.6 酶解反应第36页
 3.3 结果与讨论第36-43页
  3.3.1 温度对酶解反应的影响第36-37页
  3.3.2 pH值对酶解反应的影响第37-38页
  3.3.3 底物浓度对酶解反应的影响第38-39页
  3.3.4 酶量对酶解反应的影响第39页
  3.3.5 金属离子对酶解反应的影响第39-40页
  3.3.6 壳聚糖脱乙酰度对降解反应的影响第40-41页
  3.3.7 酶解反应时间曲线第41-42页
  3.3.8 酶解反应过程中壳聚糖溶液的粘度变化第42-43页
 3.4 结论第43-44页
第四章 固定化脂肪酶的制备及降解试验第44-52页
 4.1 引言第44-45页
 4.2 实验方法第45页
  4.2.1 仪器与试剂第45页
  4.2.2 酶固定化方法第45页
 4.3 结果与讨论第45-50页
  4.3.1 酶与载体加入比例对固定化的影响第45-46页
  4.3.2 pH对固定化的影响第46-47页
  4.3.3 交联剂浓度对固定化的影响第47页
  4.3.4 温度对酶固定化的影响第47-48页
  4.3.5 时间对交联反应的影响第48-49页
  4.3.6 固定化酶降解壳聚糖试验第49页
  4.3.7 固定化酶的重复使用效率第49-50页
 4.4 小结第50-52页
第五章 壳聚糖降解产物的分离提纯与分析鉴定第52-57页
 5.1 引言第52页
 5.2 实验部分第52-53页
  5.2.1 仪器与试剂第52-53页
  5.2.2 柱层析条件第53页
  5.2.3 分析测定条件第53页
   5.2.3.1 还原糖含量测定第53页
   5.2.3.2 高效液相色谱分析第53页
 5.3 结果与讨论第53-56页
  5.3.1 低分子量壳聚糖样品的HPLC分析第53-54页
  5.3.2 低聚糖的分离提纯第54-55页
  5.3.3 层析样品的HPLC分析鉴定第55页
  5.3.4 层析样品的红外光谱分析第55-56页
 5.4 小结第56-57页
第六章 结论第57-59页
参考文献第59-68页
在职进修期间发表或接受的论文第68-69页
致谢第69页
作者简介第69页

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