中文摘要 | 第1-11页 |
英文摘要 | 第11-13页 |
第一部分 文献综述 | 第13-34页 |
1 银杏生物学研究进展 | 第13-30页 |
1.1 银杏化学成分 | 第14-21页 |
1.2 银杏叶提取物(GBE)及其制剂的药理作用 | 第21-26页 |
1.3 银杏叶提取物制备的主要工艺 | 第26-28页 |
1.4 银杏叶提取物市场概况 | 第28-29页 |
1.5 传统方法生产GBE利弊分析 | 第29-30页 |
2 利用细胞培养技术生产植物次生代谢产物发展概况 | 第30-32页 |
3 银杏组织、细胞培养研究概况 | 第32-34页 |
第二部分 高黄酮和内酯含量银杏愈伤组织的获得 | 第34-53页 |
1 材料与方法 | 第34-37页 |
1.1 试验材料 | 第34页 |
1.2 试验方法 | 第34-37页 |
2 结果与分析 | 第37-51页 |
2.1 激素对银杏愈伤组织诱导和生长状态的影响 | 第37-41页 |
2.2 基本培养基对银杏愈伤组织诱导和黄酮及内酯含量的影响 | 第41页 |
2.3 外植体来源对愈伤组织生长状态的影响 | 第41-44页 |
2.4 基因型对愈伤组织诱导和黄酮及内酯含量的影响 | 第44-45页 |
2.5 树龄对愈伤组织诱导和黄酮及内酯含量的影响 | 第45-46页 |
2.6 不同季节对愈伤组织诱导和黄酮及内酯含量的影响 | 第46页 |
2.7 光照对愈伤组织诱导、继代培养和黄酮及内酯含量的影响 | 第46-47页 |
2.8 培养温度对愈伤组织生长和黄酮及内酯含量的影响 | 第47页 |
2.9 继代次数对愈伤组织生长和黄酮及内酯含量的影响 | 第47-48页 |
2.10 紫外线照射对银杏愈伤组织生长和黄酮及内酯含量的影响 | 第48-49页 |
2.11 银杏愈伤组织生长和银杏黄酮及内酯含量变化曲线的绘制 | 第49-51页 |
3 讨论 | 第51-53页 |
3.1 组织来源与银杏愈伤组织诱导率的关系 | 第51-52页 |
3.2 组织来源与银杏愈伤组织培养物中次生代谢产物含量的关系 | 第52-53页 |
第三部分 银杏细胞悬浮培养系的建立及悬浮培养细胞生产银杏黄酮和内酯的生理、生化调控 | 第53-79页 |
1 材料与方法 | 第53-55页 |
1.1 材料 | 第53页 |
1.2 方法 | 第53-55页 |
2 结果与分析 | 第55-75页 |
2.1 优良银杏细胞悬浮系的获得 | 第55-57页 |
2.2 基本培养基对悬浮细胞生长和银杏黄酮及银杏内酯含量的影响 | 第57-58页 |
2.3 NAA和BA对悬浮细胞生长和银杏黄酮及银杏内酯含量的影响 | 第58页 |
2.4 pH值对悬浮细胞生长和银杏黄酮及银杏内酯含量的影响 | 第58-60页 |
2.5 碳源对悬浮细胞生长和银杏黄酮及银杏内酯含量的影响 | 第60-61页 |
2.6 接种量对悬浮培养细胞生长的影响 | 第61-62页 |
2.7 体积氧传质系数K_La对悬浮培养细胞生长和黄酮及内酯含量的影响 | 第62-64页 |
2.8 光照强度、光质和光照方式对银杏悬浮培养细胞生长和黄酮及内酯含量的影响 | 第64-66页 |
2.9 基本培养基中各因子的变化对悬浮培养细胞生长和黄酮及内酯含量的影响 | 第66-69页 |
2.10 低温处理对悬浮培养细胞生长和黄酮及内酯含量的影响 | 第69页 |
2.11 附加物、前体对悬浮培养细胞生长和黄酮及内酯含量的影响 | 第69-74页 |
2.12 摇床转速对悬浮培养细胞生长和黄酮及内酯含量的影响 | 第74页 |
2.13 悬浮培养细胞生长曲线与黄酮和内酯形成的关系 | 第74-75页 |
3 讨论 | 第75-79页 |
3.1 胁迫因子对培养物中目标次生代谢产物含量的影响 | 第75-76页 |
3.2 细胞分化程度和和培养物中次生代谢产物含量的关系 | 第76-79页 |
第四部分 银杏叶及组织、细胞培养物中有效成分的提取 | 第79-88页 |
1 材料、试剂及仪器 | 第79页 |
1.1 材料 | 第79页 |
1.2 试剂 | 第79页 |
1.3 仪器 | 第79页 |
2 方法 | 第79-80页 |
2.1 银杏叶及组织细胞培养物中有效成分的提取 | 第79页 |
2.2 银杏叶黄酮苷浸出率(%)的计算 | 第79-80页 |
2.3 银杏有效成分的测定 | 第80页 |
3 结果与分析 | 第80-85页 |
3.1 不同有机溶剂提取效果的比较 | 第80-81页 |
3.2 不同操作方式的比较 | 第81-85页 |
4 讨论 | 第85-88页 |
4.1 微波萃取在银杏叶有效成分提取中的应用 | 第85-86页 |
4.2 超声波在银杏叶有效成分提取中的应用 | 第86-88页 |
第五部分 银杏叶及组织、细胞培养物中有效成分的纯化 | 第88-99页 |
1 材料和方法 | 第88-89页 |
1.1 材料 | 第88页 |
1.2 吸附树脂 | 第88页 |
1.3 方法 | 第88-89页 |
2 结果与分析 | 第89-97页 |
2.1 树脂静态吸附能力的测定 | 第89-90页 |
2.2 树脂解吸能力的测定 | 第90页 |
2.3 HPD100树脂静态吸附条件的研究 | 第90-91页 |
2.4 提取液pH值对HPD100大孔吸附树脂吸附性能的影响 | 第91-92页 |
2.5 最佳洗涤液的选择 | 第92页 |
2.6 HPD100树脂的动态吸附、解吸性能研究 | 第92-96页 |
2.7 纯化后提取物中有效成分含量分析 | 第96页 |
2.8 HPD100树脂吸附、使用寿命考核 | 第96-97页 |
2.9 HPD100树脂的强化、再生处理 | 第97页 |
3 讨论 | 第97-99页 |
3.1 HPD100大孔吸附树脂精制GBE的机理探讨 | 第97-98页 |
3.2 不同树脂精制、吸附GBE的性能比较 | 第98-99页 |
第六部分 银杏叶及组织、细胞培养物中有效成分的检测 | 第99-113页 |
1 材料、试剂及仪器 | 第99-100页 |
1.1 材料 | 第99页 |
1.2 试剂 | 第99页 |
1.3 仪器 | 第99-100页 |
2 银杏有效成分测定方法 | 第100-103页 |
2.1 银杏黄酮含量的分光光度计法测定 | 第100-101页 |
2.2 银杏黄酮含量的高效液相色普法测定 | 第101-102页 |
2.3 银杏内酯含量的分光光度计法测定 | 第102页 |
2.4 银杏内酯含量的高效液相色普法测定 | 第102-103页 |
3 结果与分析 | 第103-111页 |
3.1 银杏叶和银杏组织细胞培养物中总黄酮的测定 | 第103-110页 |
3.2 银杏叶和银杏组织细胞培养物中萜内酯的测定 | 第110-111页 |
4 讨论 | 第111-113页 |
4.1 多种GBE样品中银杏黄酮的检测 | 第111页 |
4.2 多种GBE样品中银杏内酯的检测 | 第111-113页 |
结论 | 第113-114页 |
创新点 | 第114-115页 |
附1 银杏黄酮HPLC图谱 | 第115-116页 |
附2 银杏内酯HPLC图谱 | 第116-117页 |
参考文献 | 第117-126页 |
在读期间论文发表情况 | 第126-128页 |