| 摘要 | 第1-3页 |
| Abstract | 第3-5页 |
| 中文文摘 | 第5-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-20页 |
| ·核受体作用及调节基因表达的模式 | 第12页 |
| ·核受体共调节因子的研究进展 | 第12-14页 |
| ·核受体共激活因子 | 第12-14页 |
| ·核受体共抑制因子 | 第14页 |
| ·淫羊藿的药理作用 | 第14-17页 |
| ·保护免疫系统 | 第15-16页 |
| ·调节细胞因子的功能 | 第15页 |
| ·保护巨噬细胞 | 第15页 |
| ·调节淋巴细胞的作用 | 第15-16页 |
| ·保护心脑组织 | 第16页 |
| ·调节神经内分泌系统 | 第16-17页 |
| ·性激素样作用 | 第17页 |
| ·女贞子的药理作用 | 第17-18页 |
| ·抗炎 | 第18页 |
| ·降血糖降血脂 | 第18页 |
| ·保肝作用 | 第18页 |
| ·免疫调节作用 | 第18页 |
| ·论文立题背景及主要研究内容 | 第18-20页 |
| 第2章 淫羊藿和女贞子质量标准控制 | 第20-28页 |
| ·前言 | 第20页 |
| ·分光光度法测定淫羊藿中总黄酮的含量 | 第20-21页 |
| ·仪器与试药 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-21页 |
| ·预处理 | 第20页 |
| ·对照品溶液的制备 | 第20-21页 |
| ·样品溶液的制备 | 第21页 |
| ·测定法 | 第21页 |
| ·结果 | 第21页 |
| ·高效液相色谱测定淫羊藿中淫羊藿苷的含量 | 第21-23页 |
| ·仪器与试药 | 第21-22页 |
| ·实验方法 | 第22页 |
| ·色谱条件与系统适用性试验 | 第22页 |
| ·对照品溶液的制备 | 第22页 |
| ·样品溶液的制备 | 第22页 |
| ·测定法 | 第22页 |
| ·结果 | 第22-23页 |
| ·高效液相色谱测定女贞子中齐墩果酸的含量 | 第23-26页 |
| ·仪器与试药 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24页 |
| ·色谱条件与系统适用性试验 | 第24页 |
| ·对照品溶液制备 | 第24页 |
| ·供试品溶液制备 | 第24页 |
| ·样品测定 | 第24页 |
| ·结果 | 第24-26页 |
| ·讨论 | 第26-27页 |
| ·本章小结 | 第27-28页 |
| 第3章 大鼠不同脑区SRC-1和NCOR mRNA的表达 | 第28-40页 |
| ·前言 | 第28页 |
| ·实验材料 | 第28-30页 |
| ·实验动物 | 第28页 |
| ·动物来源 | 第28页 |
| ·饲养条件 | 第28页 |
| ·主要试剂 | 第28-29页 |
| ·主要仪器 | 第29页 |
| ·主要溶液的配制 | 第29-30页 |
| ·TAE电泳缓冲液的配制 | 第29-30页 |
| ·3%琼脂糖凝胶配制 | 第30页 |
| ·MOPS缓冲液的配制 | 第30页 |
| ·1.5%甲醛变性琼脂糖凝胶的配制 | 第30页 |
| ·实验方法 | 第30-34页 |
| ·动物取材 | 第30页 |
| ·组织总RNA的提取 | 第30-32页 |
| ·组织切取与裂解 | 第30-31页 |
| ·残留DNA的消化 | 第31页 |
| ·RNA再沉淀 | 第31页 |
| ·RNA洗涤 | 第31页 |
| ·提取RNA浓度与纯度的检测 | 第31-32页 |
| ·提取RNA完整性检测 | 第32页 |
| ·反转录 | 第32-33页 |
| ·PCR反应 | 第33页 |
| ·电泳检测 | 第33页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR反应 | 第33-34页 |
| ·结果 | 第34-37页 |
| ·PCR产物电泳结果 | 第34页 |
| ·荧光定量PCR溶解曲线 | 第34-35页 |
| ·荧光定量PCR定量结果 | 第35-37页 |
| ·荧光定量PCR定量结果计算方法 | 第35-36页 |
| ·荧光定量PCR定量结果 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-38页 |
| ·本章小结 | 第38-40页 |
| 第4章 淫羊藿、女贞子对大鼠脑组织 SRC-1和NCOR mRNA表达的影响 | 第40-56页 |
| ·前言 | 第40页 |
| ·实验材料 | 第40-41页 |
| ·实验动物 | 第40页 |
| ·动物来源 | 第40页 |
| ·饲养条件 | 第40页 |
| ·主要试剂 | 第40页 |
| ·主要仪器 | 第40-41页 |
| ·主要溶液的配制 | 第41页 |
| ·TAE电泳缓冲液的配制 | 第41页 |
| ·3%琼脂糖凝胶配制 | 第41页 |
| ·MOPS缓冲液的配制 | 第41页 |
| ·1.5%甲醛变性琼脂糖凝胶的配制 | 第41页 |
| ·实验方法 | 第41-46页 |
| ·淫羊藿、女贞子煎服液的制备 | 第41页 |
| ·氯米芬、倍美力药液的制备 | 第41-42页 |
| ·大鼠给药 | 第42页 |
| ·大鼠取材 | 第42页 |
| ·组织总RNA的提取 | 第42-44页 |
| ·组织切取与裂解 | 第42页 |
| ·残留DNA的消化 | 第42-43页 |
| ·RNA再沉淀 | 第43页 |
| ·RNA洗涤 | 第43页 |
| ·提取RNA浓度与纯度的检测 | 第43-44页 |
| ·提取RNA完整性检测 | 第44页 |
| ·反转录 | 第44-45页 |
| ·PCR反应 | 第45页 |
| ·电泳检测 | 第45页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR反应 | 第45-46页 |
| ·结果 | 第46-53页 |
| ·PCR产物电泳结果 | 第46页 |
| ·荧光定量PCR溶解曲线 | 第46-47页 |
| ·荧光定量PCR定量结果 | 第47-53页 |
| ·荧光定量PCR定量结果计算方法 | 第47页 |
| ·不同给药大鼠不同脑区SRC-1和NCOR mRNA表达的定量结果 | 第47-53页 |
| ·讨论 | 第53-54页 |
| ·淫羊藿对SRC-1和NCOR mRNA表达的影响 | 第53-54页 |
| ·女贞子对SRC-1和NCOR mRNA表达的影响 | 第54页 |
| ·本章小结 | 第54-56页 |
| 第5章 淫羊藿、女贞子对培养细胞SRC-1和NCOR mRNA表达的影响 | 第56-72页 |
| ·前言 | 第56页 |
| ·实验材料 | 第56-59页 |
| ·实验动物与细胞 | 第56页 |
| ·动物来源 | 第56页 |
| ·饲养条件 | 第56页 |
| ·实验细胞 | 第56页 |
| ·主要试剂 | 第56-57页 |
| ·主要仪器 | 第57页 |
| ·主要试剂 | 第57-59页 |
| ·MEM培养基的配制 | 第57页 |
| ·L-15培养基的配制 | 第57-58页 |
| ·L-15培养基的配制 | 第58页 |
| ·胰蛋白酶消化液的配制 | 第58页 |
| ·TAE电泳缓冲液的配制 | 第58页 |
| ·3%琼脂糖凝胶配制 | 第58页 |
| ·MOPS缓冲液的配制 | 第58-59页 |
| ·1.5%甲醛变性琼脂糖凝胶的配制 | 第59页 |
| ·实验方法 | 第59-64页 |
| ·淫羊藿女贞子煎服液的制备 | 第59页 |
| ·氯米芬、倍美力药液的制备 | 第59页 |
| ·大鼠给药 | 第59页 |
| ·含药血清制备 | 第59页 |
| ·细胞培养 | 第59-61页 |
| ·细胞传代 | 第59-61页 |
| ·细胞给药 | 第61页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第61-63页 |
| ·洗涤 | 第61页 |
| ·裂解 | 第61页 |
| ·萃取 | 第61页 |
| ·沉淀 | 第61-62页 |
| ·DNase I消化残留DNA | 第62页 |
| ·RNA再沉淀 | 第62页 |
| ·RNA洗涤 | 第62页 |
| ·提取RNA浓度与纯度的检测 | 第62-63页 |
| ·提取RNA完整性检测 | 第63页 |
| ·反转录 | 第63页 |
| ·PCR反应 | 第63-64页 |
| ·电泳检测 | 第64页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR反应 | 第64页 |
| ·实验结果 | 第64-69页 |
| ·PCR产物电泳结果 | 第64-65页 |
| ·荧光定量PCR溶解曲线 | 第65页 |
| ·荧光定量PCR定量结果 | 第65-69页 |
| ·荧光定量PCR定量结果计算方法 | 第65页 |
| ·不同给药的乳腺癌细胞MCF-7和MDA-MB-231的SRC-1和NCOR mRNA表达的定量结果 | 第65-69页 |
| ·讨论 | 第69页 |
| ·本章小结 | 第69-72页 |
| 结论 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-80页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82-84页 |
| 个人简历 | 第84-86页 |
