摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-10页 |
引言 | 第10-21页 |
一、产纤维素酶的微生物 | 第10-11页 |
二、天然纤维素在降解过程中超分子结构的变化 | 第11-12页 |
1. 天然纤维素的结构 | 第11页 |
2. 天然纤维素在降解过程中分子结构的变化 | 第11-12页 |
三、纤维素酶的降解机制 | 第12-15页 |
1. 真菌的纤维素降解机制 | 第12-14页 |
2. 细菌降解纤维素的机制 | 第14-15页 |
四、微生物纤维素酶系统的构成及结构 | 第15-17页 |
1. 微生物纤维素酶系统的构成 | 第15-16页 |
2. 微生物纤维素酶分子的结构 | 第16-17页 |
五、纤维素酶的应用 | 第17-21页 |
1. 纤维素酶在饲料工业中的应用 | 第17-18页 |
2. 纤维素酶在食品工业上的应用 | 第18页 |
3. 在治理环境中的应用 | 第18页 |
4. 在发酵工业中的应用 | 第18-19页 |
5. 在纺织工业上的应用 | 第19页 |
6. 其它 | 第19-21页 |
第一节 Sporocytophaga sp. JL-01 和 SD-02 对纤维素的降解现象 | 第21-24页 |
一、材料与方法 | 第21-22页 |
1. 实验材料 | 第21页 |
2. 实验方法 | 第21-22页 |
二、结果分析 | 第22-23页 |
1. 两株生孢噬纤维菌固体培养降解现象 | 第22页 |
2. 生孢噬纤维菌滤纸纤维素液体培养的现象 | 第22-23页 |
三、小结 | 第23-24页 |
第二节 液体发酵过程中 pH 及还原糖总糖含量的变化 | 第24-28页 |
一、材料与方法 | 第24-25页 |
1. 实验材料 | 第24页 |
2. 实验方法 | 第24-25页 |
二、结果分析 | 第25-27页 |
1. 滤纸液体培养和葡萄糖液体培养时Sporocytophaga sp. JL-01 和SD-02 PH 的变化 | 第25-26页 |
2. Sporocytophaga sp. JL-01 和SD-02 滤纸液体培养时还原糖和总糖的变化 | 第26-27页 |
三、小结 | 第27-28页 |
第三节 影响 Sporocytophaga sp. JL-01 酶活的几个因素 | 第28-33页 |
一、材料与方法 | 第28-29页 |
1. 实验材料 | 第28页 |
2. 实验方法 | 第28-29页 |
二、结果与分析 | 第29-32页 |
1. 酶液用量对CMCase 酶解反应生成还原糖的影响 | 第29-30页 |
2. 酶液用量对FPase 酶解反应生成还原糖的影响 | 第30页 |
3. pH 对FPase 酶解反应产生还原糖的影响 | 第30-31页 |
4. 反应时间长短和滤纸处理前后对FPase 酶解反应产生还原糖的影响 | 第31-32页 |
三、小结 | 第32-33页 |
第四节 Sporocytophaga sp. JL-01 最佳产 FPase 条件的优化 | 第33-41页 |
一、材料与方法 | 第33-34页 |
1. 实验材料 | 第33页 |
2. 实验方法 | 第33-34页 |
二、结果与分析 | 第34-39页 |
1. 不同单因素水平对产酶的影响 | 第34-37页 |
2. 正交实验 | 第37-39页 |
三、小结 | 第39-41页 |
第五节 FPase 的分离纯化及部分酶学性质的研究 | 第41-50页 |
一、FPase 的分离纯化材料与方法 | 第41-42页 |
1. 实验材料 | 第41页 |
2. 实验方法 | 第41-42页 |
二、FPase 的分离纯化结果分析 | 第42-46页 |
1. FPase 的分离纯化结果 | 第42-45页 |
2. FPase 纯度的进一步检测 | 第45-46页 |
三、Sporocytophaga sp. JL-01 FPase 部分酶学性质的研究 | 第46-49页 |
1. 实验材料 | 第46页 |
2. 实验方法 | 第46页 |
3. 结果分析 | 第46-49页 |
四、小结 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-53页 |
致谢 | 第53页 |