| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-15页 |
| 1 绪论 | 第15-30页 |
| ·大果沙棘特性和资源概况 | 第15-16页 |
| ·沙棘的研究现状 | 第16-20页 |
| ·沙棘的化学成分 | 第16-18页 |
| ·沙棘的生理、药理作用 | 第18-20页 |
| ·黄酮类化合物研究进展 | 第20-27页 |
| ·黄酮类化合物的分离提取 | 第20-22页 |
| ·黄酮类化合物的纯化 | 第22-24页 |
| ·黄酮类化合物的测定 | 第24页 |
| ·黄酮类化合物的生物活性 | 第24-27页 |
| ·沙棘黄酮的开发前景 | 第27-28页 |
| ·本研究的目的、意义及主要内容 | 第28-30页 |
| 2 大果沙棘果渣成分分析 | 第30-37页 |
| ·实验材料与仪器 | 第30-31页 |
| ·材料与试剂 | 第30-31页 |
| ·实验仪器 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31-35页 |
| ·大果沙棘果渣中水分含量的测定 | 第31页 |
| ·大果沙棘果渣中灰分含量的测定 | 第31页 |
| ·大果沙棘果渣中粗脂肪含量的测定及不饱和脂肪酸成分分析 | 第31-32页 |
| ·大果沙棘果渣中多糖含量的测定 | 第32页 |
| ·大果沙棘果渣中蛋白含量的测定 | 第32-33页 |
| ·大果沙棘果渣中多酚含量的测定 | 第33-34页 |
| ·大果沙棘果渣中黄酮含量的测定 | 第34-35页 |
| ·实验结果与分析 | 第35-36页 |
| ·大果沙棘果渣中主要化学成分 | 第35页 |
| ·大果沙棘果渣脂肪含量及脂肪酸气相色谱分析 | 第35-36页 |
| ·本章小结 | 第36-37页 |
| 3 酶辅助法提取大果沙棘黄酮工艺研究 | 第37-49页 |
| ·实验材料与仪器 | 第37-38页 |
| ·材料与试剂 | 第37-38页 |
| ·实验仪器 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-40页 |
| ·黄酮含量的测定 | 第38页 |
| ·酶辅助法提取大果沙棘黄酮工艺流程 | 第38页 |
| ·酶辅助法提取大果沙棘黄酮单因素试验 | 第38-40页 |
| ·实验结果与分析 | 第40-47页 |
| ·单因素试验分析 | 第40-44页 |
| ·响应面优化实验结果分析 | 第44-47页 |
| ·本章小结 | 第47-49页 |
| 4 大孔树脂吸附分离大果沙棘黄酮的研究 | 第49-58页 |
| ·实验材料与仪器 | 第49-50页 |
| ·材料与试剂 | 第49-50页 |
| ·实验仪器 | 第50页 |
| ·实验方法 | 第50-52页 |
| ·大果沙棘黄酮样品溶液的制备 | 第50页 |
| ·树脂的预处理与装柱 | 第50-51页 |
| ·大孔吸附树脂的筛选 | 第51页 |
| ·X-5大孔树脂柱吸附分离大果沙棘黄酮条件优化 | 第51-52页 |
| ·X-5大孔树脂柱吸附分离前后大果沙棘黄酮纯度的测定 | 第52页 |
| ·实验结果与分析 | 第52-57页 |
| ·不同大孔树脂静态吸附、解吸大果沙棘黄酮性能 | 第52-53页 |
| ·不同大孔树脂对大果沙棘黄酮静态吸附及解吸动力学 | 第53-54页 |
| ·X-5大孔树脂柱吸附分离大果沙棘黄酮条件优化 | 第54-57页 |
| ·X-5大孔树脂柱吸附分离前后大果沙棘黄酮纯度的测定结果 | 第57页 |
| ·本章小结 | 第57-58页 |
| 5 大果沙棘黄酮抗氧化性能研究 | 第58-67页 |
| ·实验材料与仪器 | 第58-59页 |
| ·材料与试剂 | 第58-59页 |
| ·实验仪器 | 第59页 |
| ·实验方法 | 第59-62页 |
| ·大果沙棘黄酮溶液的制备 | 第59页 |
| ·大果沙棘黄酮抗氧化实验方法 | 第59-62页 |
| ·实验结果与讨论 | 第62-65页 |
| ·大果沙棘黄酮总抗氧化能力测定结果 | 第62页 |
| ·大果沙棘黄酮对羟自由基(·OH)的清除效果 | 第62-63页 |
| ·大果沙棘黄酮对超氧阴离子(O_2~-·)的清除效果 | 第63-64页 |
| ·大果沙棘黄酮对DPPH·自由基清除效果 | 第64-65页 |
| ·大果沙棘黄酮对ABTS~+自由基的清除效果 | 第65页 |
| ·本章小结 | 第65-67页 |
| 6 大果沙棘复合制剂抗疲劳功能研究 | 第67-73页 |
| ·实验材料与仪器 | 第67-68页 |
| ·材料与试剂 | 第67-68页 |
| ·实验仪器 | 第68页 |
| ·实验方法 | 第68-69页 |
| ·动物分组与给药 | 第68页 |
| ·动物爬竿实验 | 第68页 |
| ·负重游泳实验及力竭游泳时间的测定 | 第68页 |
| ·血乳酸(BLA)和血尿素氮(BUN)含量的测定 | 第68页 |
| ·肝糖原(LG)及肌糖原(MG)含量的测定 | 第68-69页 |
| ·数据分析 | 第69页 |
| ·实验结果与分析 | 第69-71页 |
| ·大果沙棘复合制剂对小鼠体重的影响 | 第69页 |
| ·大果沙棘复合制剂对小鼠爬竿时间的影响 | 第69页 |
| ·大果沙棘复合制剂对小鼠负重游泳时间的影响 | 第69-70页 |
| ·大果沙棘复合制剂对小鼠血乳酸(BLA)和血清尿素氮(BUN)的影响 | 第70页 |
| ·大果沙棘复合制剂对小鼠肝糖原(LG)和肌糖原(MG)的影响 | 第70-71页 |
| ·本章小结 | 第71-73页 |
| 7 大果沙棘黄酮降血脂功能研究 | 第73-83页 |
| ·实验材料与仪器 | 第73-74页 |
| ·材料与试剂 | 第73-74页 |
| ·实验仪器 | 第74页 |
| ·实验方法 | 第74-77页 |
| ·动物分组与高脂模型的建立 | 第74页 |
| ·动物给药方法 | 第74页 |
| ·测定指标与方法 | 第74-77页 |
| ·数据分析 | 第77页 |
| ·实验结果与讨论 | 第77-81页 |
| ·饲料诱导大鼠高脂模型的建立结果 | 第77-78页 |
| ·大果沙棘黄酮对高脂膳食诱导高血脂大鼠脂肪组织形态影响 | 第78-79页 |
| ·大果沙棘黄酮降血脂功能实验结果 | 第79-81页 |
| ·本章小结 | 第81-83页 |
| 8 大果沙棘黄酮抗肿瘤活性研究 | 第83-105页 |
| ·实验材料与仪器 | 第83-85页 |
| ·材料与试剂 | 第83-84页 |
| ·实验仪器 | 第84页 |
| ·溶液配制 | 第84-85页 |
| ·实验方法 | 第85-92页 |
| ·细胞复苏 | 第85页 |
| ·细胞培养 | 第85页 |
| ·细胞传代 | 第85-86页 |
| ·细胞冻存方法 | 第86-87页 |
| ·大果沙棘黄酮对肿瘤细胞的抑制率的测定 | 第87页 |
| ·肿瘤细胞形态观察 | 第87页 |
| ·流式细胞术(FCM)检测HepG2肿瘤细胞周期 | 第87-88页 |
| ·单细胞凝胶电泳检测HepG2肿瘤细胞DNA损伤 | 第88页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测HepG2肿瘤细胞DNA损伤 | 第88-90页 |
| ·AnnexinV—FITC/PI双染法检测HepG2肿瘤细胞凋亡 | 第90页 |
| ·免疫组化学法检测细胞Bcl-2和Bax蛋白的表达 | 第90-91页 |
| ·HepG2肿瘤细胞caspase3酶活力的测定 | 第91-92页 |
| ·实验结果与讨论 | 第92-103页 |
| ·MTT法测定大果沙棘黄酮对肿瘤细胞增殖的影响 | 第92-94页 |
| ·大果沙棘黄酮对HepG2肿瘤细胞形态的影响 | 第94-96页 |
| ·大果沙棘黄酮对HepG2肿瘤细胞周期的影响 | 第96-97页 |
| ·单细胞凝胶电泳检测大果沙棘黄酮对HepG2细胞DNA损伤结果 | 第97-98页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测大果沙棘黄酮对HepG2肿瘤细胞DNA损伤结果 | 第98-99页 |
| ·AnnexinV—FITC/PI双染法检测HepG2肿瘤细胞凋亡 | 第99-100页 |
| ·免疫组化学法检测HepG2细胞Bcl-2和Bax蛋白的表达 | 第100-103页 |
| ·大果沙棘黄酮对HepG2肿瘤细胞caspase3酶活力的影响 | 第103页 |
| ·本章小结 | 第103-105页 |
| 结论 | 第105-107页 |
| 参考文献 | 第107-120页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121-122页 |
