| 致谢 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| 1 文献综述 | 第9-17页 |
| ·植物自交不亲和性及其类型 | 第9页 |
| ·孢子体自交不亲和研究进展 | 第9-10页 |
| ·孢子体自交不亲和表现 | 第9页 |
| ·孢子体自交不亲和发生机制 | 第9-10页 |
| ·配子体自交不亲和研究进展 | 第10-13页 |
| ·以S-RNase 为基础的SI 信号转导途径 | 第10-12页 |
| ·SI 信号分子—S-RNase | 第10-11页 |
| ·信号分子的接受体——花粉S 蛋白 | 第11页 |
| ·以S-RNase 为基础的细胞信号转导途径 | 第11-12页 |
| ·罂粟科SI 信号转导的研究进展 | 第12-13页 |
| ·禾本科自交不亲和性机理 | 第13页 |
| ·蛋白质组学的研究进展 | 第13-17页 |
| ·蛋白质组学分析技术 | 第13-15页 |
| ·双向电泳 | 第13-14页 |
| ·图像分析 | 第14-15页 |
| ·蛋白质组学在植物研究中的应用 | 第15-17页 |
| ·逆境胁迫下植物蛋白质组学研究 | 第15页 |
| ·突变体的蛋白质组学研究 | 第15-16页 |
| ·植物亚细胞蛋白质组学 | 第16-17页 |
| 2 引言 | 第17-19页 |
| 3 材料与方法 | 第19-34页 |
| ·材料 | 第19页 |
| ·试剂 | 第19页 |
| ·仪器 | 第19页 |
| ·蛋白质组分析方法 | 第19-23页 |
| ·试验材料的种植、取样与鉴定 | 第19页 |
| ·蛋白质的提取 | 第19-20页 |
| ·三氯乙酸/丙酮法（TCA/acetone extraction） | 第19页 |
| ·酚提取法（phenol extraction） | 第19-20页 |
| ·改良的酚提取法 | 第20页 |
| ·蛋白质的溶解 | 第20页 |
| ·蛋白质样品浓度测定 | 第20-21页 |
| ·第一向等电聚焦电泳条件的优化 | 第21-22页 |
| ·第二向SDS-PAGE 电泳 | 第22页 |
| ·凝胶染色 | 第22-23页 |
| ·凝胶图像分析、蛋白质点的胶内酶解和串联质谱分析 | 第23页 |
| ·分子生物学类实验方法 | 第23-34页 |
| ·基因组DNA 的提取 | 第23-25页 |
| ·P1 和S7 基因DNA 序列的克隆 | 第25-29页 |
| ·引物 | 第25页 |
| ·反应体系 | 第25-26页 |
| ·扩增产物的电泳纯化 | 第26-27页 |
| ·DNA 片段的克隆 | 第27-29页 |
| ·PCR 检测阳性克隆 | 第29页 |
| ·PCR 产物的测序 | 第29页 |
| ·拟南芥转基因功能验证 | 第29-34页 |
| ·植物材料与种植方法 | 第29页 |
| ·引物设计 | 第29-30页 |
| ·基因序列的扩增 | 第30-31页 |
| ·表达载体构建 | 第31页 |
| ·农杆菌感受态细胞的制备 | 第31-32页 |
| ·PCR 验证及菌种保存 | 第32页 |
| ·拟南芥转化 | 第32-33页 |
| ·转基因拟南芥的筛选鉴定 | 第33-34页 |
| 4 结果与分析 | 第34-50页 |
| ·自交不亲和与亲和阶段的田间表现 | 第34页 |
| ·三种方法提取的蛋白质样品双向电泳效果比较 | 第34-36页 |
| ·不同聚焦时间对双向电泳图谱的影响 | 第36-37页 |
| ·不同丙烯酰胺浓度对蛋白质分辨率的影响 | 第37页 |
| ·不同上样量对蛋白质分辨率的影响 | 第37-38页 |
| ·蛋白质表达分析 | 第38-40页 |
| ·差异蛋白点的质谱鉴定 | 第40-45页 |
| ·p1 及s7 基因DNA 序列的克隆 | 第45-46页 |
| ·拟南芥转基因功能验证试验 | 第46-50页 |
| ·植物表达载体PBI-P1 及PBI-S7 的构建 | 第46-48页 |
| ·重组质粒PBI- P1 及PBI-S7 转化农杆菌 | 第48-49页 |
| ·转基因拟南芥的筛选 | 第49-50页 |
| 5 讨论 | 第50-52页 |
| ·如何获得高重现性的双向电泳图谱 | 第50页 |
| ·差异蛋白质的功能 | 第50-51页 |
| ·关于自交不亲和相关基因P1 及S7 | 第51页 |
| ·进一步的研究设想 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-61页 |
| 附录1 | 第61-63页 |
| 附录2 | 第63-65页 |
| 附录3 | 第65-67页 |
| Abstract | 第67-68页 |
