摘要 | 第5-7页 |
abstract | 第7-8页 |
第1章 绪论 | 第14-29页 |
1.1 循环肿瘤细胞的应用和富集技术 | 第14-18页 |
1.1.1 循环肿瘤细胞的概述 | 第14-15页 |
1.1.2 循环肿瘤细胞的应用 | 第15-16页 |
1.1.3 循环肿瘤细胞富集技术概述 | 第16-18页 |
1.2 纳米结构基底检测循环肿瘤细胞 | 第18-21页 |
1.2.1 纳米结构基底概述 | 第18页 |
1.2.2 循环肿瘤细胞的检测 | 第18-21页 |
1.3 磁性粒子对循环肿瘤细胞的检测 | 第21-24页 |
1.3.1 概述 | 第21-22页 |
1.3.2 循环肿瘤细胞的检测 | 第22-24页 |
1.4 水凝胶在循环肿瘤细胞检测的应用 | 第24-26页 |
1.5 课题的提出与研究内容 | 第26-29页 |
第2章 纳米纤维@水凝胶基底捕获和纯化CTCs | 第29-42页 |
2.1 前言 | 第29-30页 |
2.2 实验部分 | 第30-34页 |
2.2.1 试剂与仪器 | 第30-31页 |
2.2.2 实验方案设计 | 第31-32页 |
2.2.3 纳米纤维@水凝胶界面的构建 | 第32页 |
2.2.4 anti-EpCAM-CS@Hydrogel基底最佳捕获时间的考察 | 第32-33页 |
2.2.5 anti-EpCAM-CS@Hydrogel基底捕获效率的考察 | 第33页 |
2.2.6 anti-EpCAM-CS@Hydrogel基底特异性的考察 | 第33页 |
2.2.7 anti-EpCAM-CS@Hydrogel基底捕获细胞活性的考察 | 第33页 |
2.2.8 anti-EpCAM-CS@Hydrogel基底灵敏度的考察 | 第33-34页 |
2.3 结果与讨论 | 第34-40页 |
2.3.1 CS@Hydrogel界面的制备和表征 | 第34-36页 |
2.3.2 细胞孵育时间对捕获效率的影响 | 第36-37页 |
2.3.3 细胞捕获效率的考察 | 第37-38页 |
2.3.4 anti-EpCAM-CS@Hydrogel基底特异性的考察 | 第38-39页 |
2.3.5 anti-EpCAM-CS@Hydrogel基底捕获细胞活性的考察 | 第39页 |
2.3.6 anti-EpCAM-CS@Hydrogel基底灵敏度的考察 | 第39-40页 |
2.4 本章小结 | 第40-42页 |
第3章 抗粘附纳米水凝胶基底捕获和纯化CTCs | 第42-55页 |
3.1 前言 | 第42-43页 |
3.2 实验部分 | 第43-47页 |
3.2.1 试剂与仪器 | 第43-44页 |
3.2.2 实验方案设计 | 第44页 |
3.2.3 水凝胶纳米结构基底的构筑 | 第44-45页 |
3.2.4 孵育时间对捕获效率影响的考察 | 第45页 |
3.2.5 anti-EpCAM-SMHNPs捕获性能的考察 | 第45-46页 |
3.2.6 anti-EpCAM-SMHNPs基底捕获特异性和相容性的考察 | 第46页 |
3.2.7 anti-EpCAM-SMHNPs基底捕获灵敏度的考察 | 第46页 |
3.2.8 anti-EpCAM-SMHNPs基底对病人样的检测 | 第46-47页 |
3.3 结果与讨论 | 第47-53页 |
3.3.1 anti-EpCAM-SMHNPs基底的制备和表征 | 第47-48页 |
3.3.2 孵育时间对捕获效率的影响 | 第48-49页 |
3.3.3 anti-EpCAM-SMHNPs捕获性能的考察 | 第49-50页 |
3.3.4 anti-EpCAM-SMHNPs基底捕获特异性和生物相容性的考察 | 第50-51页 |
3.3.5 anti-EpCAM-SMHNPs基底捕获灵敏度的考察 | 第51-52页 |
3.3.6 anti-EpCAM-SMHNPs基底对病人样的检测 | 第52-53页 |
3.4 本章小结 | 第53-55页 |
第4章 温敏纳米纤维特异性纯化和释放CTCs | 第55-73页 |
4.1 前言 | 第55-56页 |
4.2 实验部分 | 第56-61页 |
4.2.1 试剂与仪器 | 第56-57页 |
4.2.2 实验方案设计 | 第57-58页 |
4.2.3 壳聚糖纳米纤维的制备 | 第58页 |
4.2.4 壳聚糖温敏纳米纤维界面的修饰 | 第58-59页 |
4.2.5 细胞捕获效率的考察 | 第59-60页 |
4.2.6 纤维基底对混合细胞的捕获 | 第60页 |
4.2.7 纤维基底对少量MCF-7细胞的捕获考察 | 第60页 |
4.2.8 纤维基底对模拟病人样本的捕获 | 第60-61页 |
4.3 结果与讨论 | 第61-72页 |
4.3.1 温敏纳米纤维界面的制备和表征 | 第61-63页 |
4.3.2 PNIPAM修饰时间对细胞捕获和纯化的影响 | 第63-65页 |
4.3.3 最佳细胞孵育时间的确定 | 第65-66页 |
4.3.4 不同修饰界面的捕获和纯化 | 第66-67页 |
4.3.5 释放细胞的活性考察 | 第67-68页 |
4.3.6 aptamer-P-CNFs对不同类型细胞的捕获和纯化 | 第68-69页 |
4.3.7 aptamer-P-CNFs纤维基底对混合细胞的捕获 | 第69-70页 |
4.3.8 aptamer-P-CNFs基底对少量MCF-7细胞的捕获 | 第70-71页 |
4.3.9 aptamer-P-CNFs基底对模拟病人样本的捕获 | 第71-72页 |
4.4 本章小结 | 第72-73页 |
第5章 水凝胶@磁纳米颗粒捕获和释放CTCs | 第73-86页 |
5.1 前言 | 第73页 |
5.2 实验部分 | 第73-78页 |
5.2.1 试剂与仪器 | 第73-74页 |
5.2.2 实验方案设计 | 第74-75页 |
5.2.3 磁性纳米颗粒的合成 | 第75-76页 |
5.2.4 水凝胶包裹磁纳米颗粒的合成 | 第76页 |
5.2.5 水凝胶包裹磁纳米颗粒的功能化 | 第76页 |
5.2.6 细胞孵育时间对捕获效率的影响 | 第76-77页 |
5.2.7 MNPs@hydrogel-anti-EpCAM捕获特异性的考察 | 第77页 |
5.2.8 MNPs@hydrogel-anti-EpCAM释放性能的考察 | 第77页 |
5.2.9 捕获和释放细胞活性的考察 | 第77页 |
5.2.10 MNPs@hydrogel-anti-EpCAM灵敏度的考察 | 第77-78页 |
5.2.11 MNPs@hydrogel-anti-EpCAM对病人样的检测 | 第78页 |
5.3 结果与讨论 | 第78-85页 |
5.3.1 MNPs@hydrogel-anti-EpCAM的制备和表征 | 第78-79页 |
5.3.2 孵育时间对捕获效率的影响 | 第79-80页 |
5.3.3 捕获特异性的考察 | 第80-81页 |
5.3.4 MNPs@hydrogel-anti-EpCAM对细胞捕获和释放性能的考察 | 第81-83页 |
5.3.5 MNPs@hydrogel-anti-EpCAM灵敏度的考察 | 第83-84页 |
5.3.6 MNPs@hydrogel-anti-EpCAM对病人样的检测 | 第84-85页 |
5.4 本章小结 | 第85-86页 |
第6章 荧光磁性纳米颗粒捕获和鉴定CTCs | 第86-104页 |
6.1 前言 | 第86-87页 |
6.2 实验部分 | 第87-91页 |
6.2.1 试剂与仪器 | 第87-88页 |
6.2.2 实验方案设计 | 第88页 |
6.2.3 双抗体功能化荧光磁纳米颗粒的合成 | 第88-89页 |
6.2.4 磁纳米颗粒捕获能力的考查 | 第89-90页 |
6.2.5 捕获特异性的考察 | 第90页 |
6.2.6 捕获灵敏度的考察 | 第90-91页 |
6.2.7 对病人样的检测 | 第91页 |
6.3 结果与讨论 | 第91-103页 |
6.3.1 F-MNPs的制备和表征 | 第91-93页 |
6.3.2 F-MNPs最佳使用浓度和孵育时间的确定 | 第93-94页 |
6.3.3 不同修饰磁珠对细胞捕获的考察 | 第94-96页 |
6.3.4 F-MNPs对不同类型细胞的捕获和荧光鉴定的考察 | 第96-100页 |
6.3.5 F-MNPs-E+N灵敏性的考察 | 第100-101页 |
6.3.6 F-MNPs-E+N对模拟病人样本的捕获 | 第101-102页 |
6.3.7 F-MNPs-E+N对临床病人样本的捕获 | 第102-103页 |
6.4 本章小结 | 第103-104页 |
第7章 全文总结与展望 | 第104-108页 |
7.1 全文总结 | 第104-107页 |
7.2 创新点 | 第107页 |
7.3 展望 | 第107-108页 |
参考文献 | 第108-120页 |
致谢 | 第120-121页 |
在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 | 第121-122页 |