| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 1 文献综述 | 第9-14页 |
| 1.1 遗传多样性的概念及研究意义 | 第9-10页 |
| 1.1.1 遗传多样性的概念 | 第9页 |
| 1.1.2 遗传多样性的意义 | 第9-10页 |
| 1.2 遗传多样性的研究方法 | 第10-12页 |
| 1.2.1 形态学标记 | 第10-11页 |
| 1.2.2 细胞学标记 | 第11页 |
| 1.2.3 生化标记 | 第11页 |
| 1.2.4 分子标记 | 第11-12页 |
| 1.3 不同分子标记在甜瓜遗传育种研究中的应用 | 第12-14页 |
| 2 引言 | 第14-15页 |
| 3 酥瓜基因组DNA提取及RAPD分子标记反应体系的建立 | 第15-22页 |
| 3.1 材料与方法 | 第15-17页 |
| 3.1.1 试验材料与试剂 | 第15页 |
| 3.1.2 基因组DNA提取 | 第15-16页 |
| 3.1.3 RAPD-PCR反应体系的正交试验 | 第16-17页 |
| 3.1.4 退火温度的确定 | 第17页 |
| 3.1.5 优化扩增体系的验证 | 第17页 |
| 3.2 结果与分析 | 第17-20页 |
| 3.2.1 基因组DNA提取 | 第17-18页 |
| 3.2.2 正交试验 | 第18-19页 |
| 3.2.3 退火温度的优化 | 第19-20页 |
| 3.2.4 最佳反应体系和退火温度的验证 | 第20页 |
| 3.3 讨论 | 第20-22页 |
| 4 酥瓜ISSR-PCR反应体系建立与优化 | 第22-29页 |
| 4.1 材料与方法 | 第22-24页 |
| 4.1.1 试验材料和试剂 | 第22页 |
| 4.1.2 基因组DNA的提取 | 第22页 |
| 4.1.3 PCR扩增与正交试验 | 第22-24页 |
| 4.1.4 退火温度的确定 | 第24页 |
| 4.1.5 ISSR-PCR优化扩增体系的验证 | 第24页 |
| 4.2 结果与分析 | 第24-27页 |
| 4.2.1 ISSR-PCR扩增结果分析 | 第24-25页 |
| 4.2.2 极差分析 | 第25-26页 |
| 4.2.3 不同退火温度对ISSR扩增的影响 | 第26页 |
| 4.2.4 最佳反应体系和退火温度的验证 | 第26-27页 |
| 4.3 讨论 | 第27-29页 |
| 5 酥瓜SSR-PCR分子标记反应体系的建立 | 第29-36页 |
| 5.1 材料与方法 | 第29-32页 |
| 5.1.1 试验材料和试剂 | 第29页 |
| 5.1.2 基因组DNA的提取 | 第29页 |
| 5.1.3 PCR扩增与正交试验 | 第29-31页 |
| 5.1.4 聚丙烯酰氨凝胶电泳 | 第31页 |
| 5.1.5 退火温度的确定 | 第31页 |
| 5.1.6 SSR-PCR优化扩增体系的验证 | 第31-32页 |
| 5.2 结果与分析 | 第32-34页 |
| 5.2.1 SSR-PCR扩增结果分析 | 第32页 |
| 5.2.2 极差分析 | 第32页 |
| 5.2.3 不同退火温度对SSR扩增的影响 | 第32-33页 |
| 5.2.4 最佳反应体系和退火温度的验证 | 第33-34页 |
| 5.3 讨论 | 第34-36页 |
| 6 基于分析分子标记的酥瓜种质资源遗传多样性 | 第36-46页 |
| 6.1 材料和方法 | 第36-38页 |
| 6.1.1 试验材料和基因组DNA的提取 | 第36-37页 |
| 6.1.2 RAPD、ISSR和SSR扩增 | 第37页 |
| 6.1.3 数据分析 | 第37-38页 |
| 6.2 结果与分析 | 第38-45页 |
| 6.2.1 RAPD、ISSR和SSR多态性分析 | 第38-41页 |
| 6.2.2 聚类分析 | 第41-42页 |
| 6.2.3 主成分分析 | 第42-45页 |
| 6.3 讨论 | 第45-46页 |
| 7 全文结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 个人简介 | 第53-55页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文及申请专利 | 第55-56页 |
| 附表 | 第56-61页 |