| 摘要 | 第3-8页 |
| 引言 | 第8-11页 |
| 1 材料和方法 | 第11-24页 |
| 1.1 实验材料 | 第11-14页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第11-12页 |
| 1.1.2 实验耗材 | 第12页 |
| 1.1.3 实验相关试剂的配制 | 第12页 |
| 1.1.4 实验细胞 | 第12页 |
| 1.1.5 实验材料 | 第12-14页 |
| 1.1.6 实验设备 | 第14页 |
| 1.2 实验方法 | 第14-24页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第14-15页 |
| 1.2.2 细胞活力检测 | 第15-16页 |
| 1.2.3 脂质氧化水平测定 | 第16-17页 |
| 1.2.4 活性氧自由基测定 | 第17页 |
| 1.2.5 ATP水平测定 | 第17-18页 |
| 1.2.6 蛋白免疫印迹实验 | 第18-20页 |
| 1.2.7 JC-1 染色 | 第20页 |
| 1.2.8 凋亡检测 | 第20-21页 |
| 1.2.9 实验动物及其饲养场所 | 第21页 |
| 1.2.10 动物的分组与剂量选择 | 第21-22页 |
| 1.2.11 血液学及生化分析 | 第22页 |
| 1.2.12 脏器系数 | 第22页 |
| 1.2.13 ICP-MS检测代谢物和组织中Ti和Fe元素的含量 | 第22页 |
| 1.2.14 组织病理学检测 | 第22页 |
| 1.2.15 组织蛋白的检测 | 第22-23页 |
| 1.2.16 统计学分析 | 第23-24页 |
| 2 结果 | 第24-44页 |
| 2.1 四氧化三铁-二氧化钛双面结构纳米粒子体外毒性研究结果 | 第24-30页 |
| 2.1.1 HL7702细胞生存活力和细胞形态的变化 | 第24-25页 |
| 2.1.2 HL7702细胞氧化应激、脂质过氧化和ATP水平变化 | 第25页 |
| 2.1.3 HL7702细胞线粒体跨膜电位的变化 | 第25-26页 |
| 2.1.4 HL7702细胞蛋白表达情况 | 第26-29页 |
| 2.1.5 HL7702细胞凋亡情况 | 第29-30页 |
| 2.2 四氧化三铁-二氧化钛双面结构纳米粒子体内毒性研究结果 | 第30-44页 |
| 2.2.1 Fe_3O_4-TiO_2 NPs和TiO_2 NPs粒径分布 | 第30页 |
| 2.2.2 纳米材料急性暴露对大鼠的生存、脏器系数的影响 | 第30页 |
| 2.2.3 纳米材料Fe_3O_4-TiO_2 NPs和TiO_2 NPs对大鼠的血液系统的影响 | 第30-33页 |
| 2.2.4 纳米材料Fe_3O_4-TiO_2 NPs和TiO_2 NPs对大鼠的肝脏、肾脏及心脏功能水平生化指标的影响 | 第33页 |
| 2.2.5 纳米材料Fe_3O_4-TiO_2 NPs和TiO_2 NPs对大鼠脂质代谢水平和血清电解质水平的影响 | 第33-37页 |
| 2.2.6 代谢分析 | 第37页 |
| 2.2.7 组织中微量元素Ti和Fe含量分析 | 第37-39页 |
| 2.2.8 病理切片结果 | 第39-42页 |
| 2.2.9 Fe_3O_4-TiO_2 NPs对的大鼠肝脏组织蛋白水平变化的影响 | 第42-44页 |
| 3 讨论 | 第44-54页 |
| 3.1 四氧化三铁-二氧化钛双面结构纳米粒子体外毒性实验研究 | 第44-49页 |
| 3.1.1 线粒体膜通透性改变在细胞凋亡中的作用 | 第44-45页 |
| 3.1.2 对MAPK活性的影响 | 第45-46页 |
| 3.1.3 对p53活性的影响 | 第46页 |
| 3.1.4 对NF-κB和Akt活性的影响 | 第46-47页 |
| 3.1.5 对凋亡信号的影响 | 第47-49页 |
| 3.2 四氧化三铁-二氧化钛双面结构纳米粒子体内毒性实验研究 | 第49-54页 |
| 3.2.1 尾静脉注射Fe_3O_4-TiO_2 NPs介导SD大鼠肝损伤 | 第49-52页 |
| 3.2.2 静脉注射Fe_3O_4-TiO_2 NPs纳米颗粒导致肾、脾脏和肺轻微炎症反应 | 第52-54页 |
| 4 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-65页 |
| 附录B 英中文缩略词 | 第65-67页 |
| 在学研究成果 | 第67-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| Abstract | 第70-71页 |
