摘要 | 第3-6页 |
ABSTRACT | 第6-10页 |
第一章 前言 | 第14-24页 |
1.1 草甘膦 | 第14页 |
1.2 抗草甘膦水稻的研究现状 | 第14-16页 |
1.2.1 水稻抗草甘膦性状的获得途径 | 第14-16页 |
1.3 转基因水稻的安全性评价研究进展 | 第16-22页 |
1.3.1 “实质等同性”分析 | 第16-17页 |
1.3.2 毒性评价 | 第17页 |
1.3.3 致敏性研究 | 第17-18页 |
1.3.4 转基因水稻的非预期效应安全性评价 | 第18-22页 |
1.4 研究目的和意义 | 第22-23页 |
1.5 技术路线 | 第23-24页 |
第二章 籼稻再生培养基的优化 | 第24-32页 |
2.1 材料 | 第24-25页 |
2.1.1 植物材料 | 第24页 |
2.1.2 试剂与仪器 | 第24-25页 |
2.1.3 培养基 | 第25页 |
2.2 方法 | 第25-26页 |
2.2.1 愈伤组织诱导及继代 | 第25-26页 |
2.2.2 愈伤组织预分化和分化培养条件 | 第26页 |
2.2.3 再生培养基的优化 | 第26页 |
2.2.4 数据处理 | 第26页 |
2.3 结果与分析 | 第26-30页 |
2.3.1 芳香族氨基酸对籼稻愈伤组织分化的影响 | 第26-28页 |
2.3.2 激素Kt和IAA对籼稻愈伤组织分化的影响 | 第28-29页 |
2.3.3 芳香族氨基酸和激素协同作用对籼稻愈伤组织分化的影响 | 第29-30页 |
2.4 讨论 | 第30-32页 |
第三章 草甘膦抗性基因2MG2-EPSPS转化籼稻的研究 | 第32-46页 |
3.1 材料 | 第33-34页 |
3.1.1 植物材料 | 第33页 |
3.1.2 试剂和主要仪器 | 第33-34页 |
3.1.3 培养基 | 第34页 |
3.2 方法 | 第34-38页 |
3.2.1 籼稻愈伤组织的诱导和继代 | 第34页 |
3.2.2 筛选压的确定 | 第34页 |
3.2.3 目的基因表达框的获得 | 第34-36页 |
3.2.4 基因枪介导籼稻愈伤组织转化 | 第36-37页 |
3.2.5 转基因植株再生植株的获得 | 第37页 |
3.2.6 转基因植株的PCR检测 | 第37-38页 |
3.2.7 T_1代转基因植株的抗性检测 | 第38页 |
3.2.8 数据处理及分析 | 第38页 |
3.3 结果与分析 | 第38-45页 |
3.3.1 筛选压的确定 | 第38-39页 |
3.3.2 常规转化法转化愈伤组织及转化植株的再生 | 第39-40页 |
3.3.3 常规转化法获得的转基因植株的PCR检测 | 第40-41页 |
3.3.4 无标记转化法转化愈伤组织及转化植株的再生 | 第41-42页 |
3.3.5 无标记转化法获得的转基因植株的PCR检测 | 第42-43页 |
3.3.6 转基因籼稻T_1代中草甘膦抗性的遗传分离情况 | 第43-45页 |
3.4 讨论 | 第45-46页 |
第四章 抗草甘膦转基因水稻农艺性状非预期效应分析 | 第46-57页 |
4.1 材料 | 第46-47页 |
4.1.1 供试材料 | 第46-47页 |
4.1.2 试剂 | 第47页 |
4.2 方法 | 第47页 |
4.3 实验结果 | 第47-54页 |
4.3.1 转基因水稻遗传稳定性 | 第47-49页 |
4.3.2 转基因水稻T_2代的农艺性状非预期效应分析 | 第49-51页 |
4.3.3 喷施草甘膦除草剂对转基因水稻农艺性状非预期效应的影响 | 第51-54页 |
4.4 讨论 | 第54-57页 |
第五章 抗草甘膦转基因水稻代谢轮廓谱分析 | 第57-66页 |
5.1 材料 | 第57-59页 |
5.1.1 供试材料 | 第57-59页 |
5.1.2 试剂 | 第59页 |
5.1.3 仪器 | 第59页 |
5.2 方法 | 第59-60页 |
5.2.1 材料的预处理 | 第59页 |
5.2.2 水稻叶片代谢物的提取 | 第59-60页 |
5.2.3 色谱条件的确定 | 第60页 |
5.3 实验结果 | 第60-64页 |
5.3.1 色谱条件的确定 | 第60-62页 |
5.3.2 PTN系统的代谢物轮廓谱分析 | 第62-64页 |
5.4 讨论 | 第64-66页 |
第6章 结论及展望 | 第66-69页 |
6.1 结论 | 第66-67页 |
6.2 本研究的创新点 | 第67-68页 |
6.3 展望 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-75页 |
致谢 | 第75-76页 |