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酶法催化固相载体负载多肽的原位切割与环化

摘要第3-5页
abstract第5-6页
缩略语第10-11页
第一章 绪论第11-24页
    1.1 SrtA简介第11-14页
        1.1.1 SrtA来源第11页
        1.1.2 SrtA结构与催化机制第11-14页
    1.2 SrtA介导的连接反应的优化第14-17页
        1.2.1 SrtA特性改造第14-15页
        1.2.2 促使反应向正方向进行第15-16页
        1.2.3 拓展SrtA底物宽泛性第16-17页
    1.3 SrtA介导的连接反应的应用第17-22页
        1.3.1 多肽和蛋白质定点标记第17-18页
        1.3.2 蛋白质与蛋白质偶联第18-19页
        1.3.3 抗体定点修饰第19页
        1.3.4 蛋白质固定第19-20页
        1.3.5 定点标记细胞和病毒颗粒第20-21页
        1.3.6 多肽或蛋白质环化第21-22页
    1.4 本论文的立题依据及主要研究内容第22-24页
        1.4.1 立题依据与研究意义第22-23页
        1.4.2 主要研究内容第23-24页
第二章 SrtA介导的多价RGD大环肽合成第24-42页
    2.1 前言第24-25页
    2.2 材料与方法第25-31页
        2.2.1 原料与试剂第25-26页
        2.2.2 主要仪器第26页
        2.2.3 主要试剂配制第26-27页
        2.2.4 多价RGD大环肽合成第27-30页
            2.2.4.1 多肽固相合成原理第27-28页
            2.2.4.2 多价RGD大环肽合成设计第28-29页
            2.2.4.3 RGD线性肽合成第29-30页
            2.2.4.4 SrtA介导多价RGD大环肽合成第30页
        2.2.5 RGD肽与细胞膜上整合素竞争结合第30-31页
    2.3 结果与讨论第31-40页
        2.3.1 RGD线性肽合成第31-36页
        2.3.2 SrtA介导多价RGD大环肽合成第36-39页
        2.3.3 RGD肽与细胞膜上整合素竞争结合第39-40页
    2.4 本章小结第40-42页
第三章 SrtA介导的树脂上一锅法多肽或蛋白质修饰第42-60页
    3.1 前言第42-43页
    3.2 材料与方法第43-49页
        3.2.1 原料与试剂第43-44页
        3.2.2 主要仪器第44页
        3.2.3 主要试剂配制第44-45页
        3.2.4 树脂上合成AbzLPETGGK(DNP)S-HMBA,DNS-LPETGGS-HMBA和NH2-BK-Acp-LPETGGS-HMBA第45页
        3.2.5 ACE抑制肽合成第45-46页
        3.2.6 GG-HMDA-Biotin(3),GG-Lipid(12)和GG-PEG2000(13)合成第46-48页
        3.2.7 SrtA介导树脂上多肽切割与连接第48-49页
    3.3 结果与讨论第49-59页
        3.3.1 树脂上合成AbzLPETGGK(DNP)S-HMBA,DNS-LPETGGS-HMBA和NH2-BK-Acp-LPETGGS-HMBA第49-51页
        3.3.2 ACE抑制肽的合成第51-53页
        3.3.3 GG-HMDA-Biotin(3),GG-Lipid(12)和GG-PEG2000(13)合成第53-54页
        3.3.4 SrtA识别并切割树脂上LPETGGS信号肽第54-56页
        3.3.5 树脂上SrtA一锅法合成双功能性多肽第56-57页
        3.3.6 SrtA介导的树脂上一锅法多肽或蛋白质修饰第57-59页
    3.4 本章小结第59-60页
第四章 SrtA介导的树脂上一锅法合成大环多肽和植物环蛋白第60-71页
    4.1 前言第60-61页
    4.2 材料与方法第61-64页
        4.2.1 原料与试剂第61-62页
        4.2.2 主要仪器第62页
        4.2.3 主要试剂配制第62-63页
        4.2.4 树脂上合成NH2-[GGG]Fcb20-35[LPETGGS]-COOH,NH2-[GG]SFTI-1[LPETGGS]-COOH和NH2-[G]MⅡ[GLPETGGS]-COOH第63页
        4.2.5 SrtA介导NH2-[GGG]Fcb20-35[LPETGGS]-PEGA树脂的环化第63页
        4.2.6 SrtA介导NH2-[GG]SFTI-1[LPETGGS]-PEGA树脂的环化第63页
        4.2.7 SrtA介导NH2-[G]MΠ[GLPETGGS]-PEGA树脂的环化第63-64页
    4.3 结果与讨论第64-69页
        4.3.1 SrtA介导NH2-[GGG]Fcb20-35[LPETGGS]-PEGA树脂的环化第64-65页
        4.3.2 SrtA介导NH2-[GG]SFTI-1[LPETGGS]-PEGA树脂的环化第65-67页
        4.3.3 SrtA介导NH2-[G]MΠ[GLPETGGS]-PEGA树脂的环化第67-69页
    4.4 本章小结第69-71页
第五章 SrtA介导的树脂上一锅法合成RGD环肽库第71-83页
    5.1 前言第71页
    5.2 材料与方法第71-75页
        5.2.1 原料与试剂第71-72页
        5.2.2 主要仪器第72-73页
        5.2.3 主要试剂配制第73页
        5.2.4 PEGA树脂上合成RGD线性肽第73页
        5.2.5 SrtA介导树脂上RGD环肽合成第73页
        5.2.6 SPR检测RGD环肽与整合素结合第73-75页
        5.2.7 RGD环肽与细胞膜上整合素竞争结合第75页
    5.3 结果与讨论第75-82页
        5.3.1 PEGA树脂上合成RGD线性肽第75页
        5.3.2 PEGA树脂上SrtA一锅法合成RGD环肽第75-77页
        5.3.3 SPR检测RGD环肽与整合素结合第77-82页
        5.3.4 RGD环肽与细胞膜上整合素结合第82页
    5.4 本章小结第82-83页
主要结论与展望第83-85页
    主要结论第83-84页
    展望第84-85页
论文主要创新点第85-86页
致谢第86-87页
参考文献第87-98页
附录1 附图第98-118页
附录2 作者在博士期间发表的文章第118页

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