| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 英文对照缩略词表 | 第15-16页 |
| 第一篇 文献综述 | 第16-40页 |
| 第一章 宫颈癌治疗进展 | 第16-22页 |
| 1 宫颈癌概述 | 第16页 |
| 2 宫颈癌治疗进展 | 第16-22页 |
| 第二章 MicroRNA介导宫颈癌EMT过程的机制研究进展 | 第22-35页 |
| 1 EMT概述 | 第22-25页 |
| 2 MicroRNA调控EMT信号通路 | 第25-28页 |
| 3 MicroRNA调控EMT转录因子 | 第28-32页 |
| 4 MicroRNA调控EMT细胞连接、骨架及基质 | 第32-35页 |
| 第三章 PTTG1研究进展 | 第35-40页 |
| 1 PTTG1调控EMT转录因子 | 第35-36页 |
| 2 PTTG1调控EMT信号通路 | 第36-37页 |
| 3 PTTG1调控EMT细胞骨架 | 第37页 |
| 4 PTTG1调控基因突变 | 第37-40页 |
| 第二篇 研究内容 | 第40-95页 |
| 第一章 宫颈癌组织中miR-3666和ZEB1的表达水平及相关性研究 | 第40-58页 |
| 1 引言 | 第40-41页 |
| 2 实验材料及器材 | 第41-43页 |
| 3 实验方法 | 第43-48页 |
| 3.1 病人样本 | 第43页 |
| 3.2 Western blot实验检测宫颈癌组织与非肿瘤组织中ZEB1含量 | 第43-46页 |
| 3.3 RT-qPCR实验检测CC及NC组织中miR-3666水平 | 第46-48页 |
| 3.4 实验结果分析 | 第48页 |
| 3.5 统计学分析 | 第48页 |
| 4 实验结果 | 第48-56页 |
| 4.1 Western blot检测CC及NT组织ZEB1蛋白结果 | 第48-52页 |
| 4.2 检测CC及NT组织中miR-3666表达水平结果 | 第52-55页 |
| 4.3 斯皮尔曼等级相关系数分析miR-3666和ZEB1相关性结果 | 第55-56页 |
| 5 讨论 | 第56-58页 |
| 第二章 宫颈癌组织中miR-3666靶向调控ZEB1的机制研究 | 第58-72页 |
| 1 引言 | 第58页 |
| 2 实验材料及器材 | 第58-60页 |
| 3 实验方法 | 第60-63页 |
| 3.1 对CaSki细胞及Hela S3细胞进行细胞传代 | 第60页 |
| 3.2 携带有hsa-miR-3666及as-miR-3666的质粒转染Hela S3细胞及CaSki细胞 | 第60-61页 |
| 3.3 荧光素酶报告基因分析实验验证miR-3666靶向结合ZEB1 mRNA 3’UTR | 第61页 |
| 3.4 应用RT-qPCR技术验证构建miR-3666过表达及敲减的CaSki和H3细胞及检测过表达及表达敲减miR-3666细胞中ZEB1 mRNA水平 | 第61-63页 |
| 3.5 应用western blot实验检测miR-3666过表达及表达敲减的CaSki和H3细胞中ZEB1蛋白含量 | 第63页 |
| 3.6 实验结果分析 | 第63页 |
| 3.7 统计学分析 | 第63页 |
| 4 实验结果 | 第63-70页 |
| 4.1 应用靶点预测软件预测ZEB1与miR-3666的结合位点结果 | 第63-64页 |
| 4.2 应用细胞转染及RT-qPCR技术构建miR-3666过表达及敲减的CaSki和H3细胞结果 | 第64-65页 |
| 4.3 荧光素酶报告基因分析实验验证miR-3666靶向结合ZEB1结果 | 第65-67页 |
| 4.4 应用RT-qPCR方法检测过表达及敲减miR-3666的细胞ZEB1 mRNA水平的结果 | 第67-68页 |
| 4.5 检测miR-3666过表达及敲减的宫颈癌细胞中ZEB1蛋白含量结果 | 第68-70页 |
| 5 讨论 | 第70-72页 |
| 第三章 miR-3666通过介导ZEB1抑制宫颈癌细胞侵袭能力的研究 | 第72-78页 |
| 1 引言 | 第72页 |
| 2 实验材料及器材 | 第72-73页 |
| 3 实验方法 | 第73-74页 |
| 4 实验结果 | 第74-76页 |
| 5 讨论 | 第76-78页 |
| 第四章 PTTG1在宫颈癌组织的表达水平及调控miR-3666表达的研究 | 第78-89页 |
| 1 引言 | 第78-79页 |
| 2 实验材料及器材 | 第79页 |
| 3 实验方法 | 第79-80页 |
| 3.1 应用western blot实验检测CC及NT组织中PTTG1蛋白含量 | 第79页 |
| 3.2 将携带有hsa-PTTG1及as-PTTG1的质粒转染Hela S3细胞及CaSki细胞 | 第79页 |
| 3.3 应用RT-qPCR技术验证构建PTTG1过表达及敲减的CaSki和H3细胞系及检测过表达或表达敲减PTTG1的细胞miR-3666水平 | 第79-80页 |
| 4 实验结果 | 第80-87页 |
| 4.1 利用western blot检测CC及NT组织中PTTG1蛋白含量 | 第80-84页 |
| 4.2 构建PTTG1过表达及敲减的CaSki和H3细胞 | 第84-85页 |
| 4.3 PTTG1过表达及敲减的CaSki细胞中miR-3666表达水平 | 第85-87页 |
| 5 讨论 | 第87-89页 |
| 第五章 PTTG1通过miR-3666/ZEB1通路增强宫颈癌侵袭的研究 | 第89-95页 |
| 1 引言 | 第89页 |
| 2 实验材料及器材 | 第89-90页 |
| 3 实验方法 | 第90页 |
| 4 实验结果 | 第90-92页 |
| 5 讨论 | 第92-95页 |
| 结论 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-114页 |
| 作者简介及在校期间所取得的科研结果 | 第114-116页 |
| 致谢 | 第116页 |
