中文摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
英文缩写词表 | 第12-13页 |
第1章 绪论 | 第13-23页 |
1.1 林蛙油研究概况 | 第13页 |
1.2 林蛙油蛋白的研究进展 | 第13-14页 |
1.2.1 林蛙油蛋白含量及氨基酸组成 | 第13-14页 |
1.3 林蛙油活性肽制备 | 第14-16页 |
1.3.1 生物活性肽制备方法 | 第14-15页 |
1.3.2 林蛙肽制备方法研究进展 | 第15-16页 |
1.4 林蛙油活性肽功能研究进展 | 第16-18页 |
1.4.1 抗氧化活性研究 | 第16页 |
1.4.2 免疫活性研究 | 第16-17页 |
1.4.3 抗菌活性研究 | 第17页 |
1.4.4 其他活性研究 | 第17-18页 |
1.5 抗氧化肽 | 第18-21页 |
1.5.1 概述 | 第18页 |
1.5.2 抗氧化肽的作用机制 | 第18-19页 |
1.5.3 抗氧化与抗肿瘤 | 第19-20页 |
1.5.4 抗氧化肽的应用前景 | 第20-21页 |
1.6 本文研究的意义及主要内容 | 第21-23页 |
1.6.1 研究意义 | 第21-22页 |
1.6.2 研究内容 | 第22-23页 |
第2章 林蛙油多肽的制备及其抗氧化活性研究 | 第23-37页 |
2.1 材料与设备 | 第23-24页 |
2.1.1 实验原料 | 第23页 |
2.1.2 实验试剂 | 第23页 |
2.1.3 实验仪器与设备 | 第23-24页 |
2.2 实验方法 | 第24-28页 |
2.2.1 林蛙油干品前处理 | 第24页 |
2.2.2 林蛙油蛋白酶解反应模式 | 第24页 |
2.2.3 林蛙油水解最优酶选择 | 第24-25页 |
2.2.4 羟自由基的清除作用 | 第25页 |
2.2.5 超氧阴离子的清除作用 | 第25-26页 |
2.2.6 DPPH自由基的清除作用 | 第26页 |
2.2.7 单因素酶解工艺参数的确定 | 第26-27页 |
2.2.8 林蛙油多肽酶解工艺的优化 | 第27页 |
2.2.9 林蛙油多肽的制备与分离 | 第27页 |
2.2.10 统计学分析 | 第27-28页 |
2.3 结果与分析 | 第28-34页 |
2.3.1 林蛙油水解最优酶选择实验结果 | 第28-30页 |
2.3.2 各因素对复合酶水解实验结果的影响 | 第30-33页 |
2.3.3 最佳酶解工艺的确定 | 第33-34页 |
2.3.4 不同分子量林蛙油多肽对抗氧化活性比较 | 第34页 |
2.4 讨论 | 第34-35页 |
2.5 本章小结 | 第35-37页 |
第3章 林蛙油多肽对H_2O_2氧化损伤LO2肝细胞的影响 | 第37-43页 |
3.1 材料与设备 | 第37-38页 |
3.1.1 实验原料 | 第37页 |
3.1.2 实验试剂 | 第37页 |
3.1.3 实验仪器与设备 | 第37-38页 |
3.2 实验方法 | 第38-39页 |
3.2.1 LO2肝细胞培养 | 第38页 |
3.2.2 H_2O_2氧化损伤模型的建立 | 第38页 |
3.2.3 林蛙油多肽对氧化损伤LO2细胞的影响 | 第38-39页 |
3.2.4 统计学分析 | 第39页 |
3.3 结果与分析 | 第39-41页 |
3.3.1 H_2O_2致细胞损伤的浓度选择 | 第39-40页 |
3.3.2 林蛙油多肽对H2O2氧化损伤LO2细胞的保护作用 | 第40-41页 |
3.4 讨论 | 第41-42页 |
3.5 本章小结 | 第42-43页 |
第4章 林蛙油多肽抗肿瘤和抑菌活性研究 | 第43-49页 |
4.1 材料与设备 | 第43-44页 |
4.1.1 实验原料 | 第43页 |
4.1.2 实验试剂 | 第43页 |
4.1.3 实验仪器与设备 | 第43-44页 |
4.2 实验方法 | 第44-45页 |
4.2.1 林蛙油多肽抗肿瘤活性研究 | 第44页 |
4.2.2 林蛙油多肽的抑菌圈测定 | 第44-45页 |
4.2.3 统计学分析 | 第45页 |
4.3 结果与分析 | 第45-47页 |
4.3.1 林蛙油多肽抗肿瘤活性研究 | 第45-46页 |
4.3.2 林蛙油多肽抑菌活性测定 | 第46-47页 |
4.4 讨论 | 第47-48页 |
4.5 本章小结 | 第48-49页 |
第5章 结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-56页 |
导师及作者简介 | 第56-57页 |
致谢 | 第57页 |