| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第12-34页 |
| 1.1 酶固定化 | 第12-14页 |
| 1.1.1 物理吸附法 | 第12-13页 |
| 1.1.2 共价结合法 | 第13页 |
| 1.1.3 自组装法 | 第13-14页 |
| 1.2 酶-无机杂化纳米花 | 第14-21页 |
| 1.2.1 酶-无机杂化纳米花的种类和应用 | 第15-20页 |
| 1.2.2 杂化纳米花形成机理 | 第20-21页 |
| 1.2.3 酶-无机杂化纳米花前景展望 | 第21页 |
| 1.3 纸基微流控芯片 | 第21-32页 |
| 1.3.1 μPAD的制作方法 | 第22-26页 |
| 1.3.2 μPAD在POCT中常用分析方法 | 第26-28页 |
| 1.3.3 μPAD的应用与发展 | 第28-32页 |
| 1.4 本论文的研究意义和研究内容 | 第32-34页 |
| 第二章 基于μPAD结合GO_x&HRP-Cu_3(PO_4)_2杂化纳米花用于可视化检测葡萄糖 | 第34-45页 |
| 2.1 前言 | 第34-35页 |
| 2.2 实验部分 | 第35-36页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第35页 |
| 2.2.2 μPAD的制备 | 第35页 |
| 2.2.3 GO_x&HRP-Cu_3(PO_4)_2杂化纳米花的合成 | 第35页 |
| 2.2.4 测量和表征 | 第35-36页 |
| 2.2.5 葡萄糖分析 | 第36页 |
| 2.2.6 全血分析 | 第36页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第36-44页 |
| 2.3.1 实验设计原理 | 第36-38页 |
| 2.3.2 GO_x&HRP-Cu_3(PO_4)_2杂化纳米花的探究 | 第38-41页 |
| 2.3.3 GO_x&HRP-Cu_3(PO_4)_2杂化纳米花的表征和性质 | 第41-42页 |
| 2.3.4 葡萄糖的比色分析 | 第42-43页 |
| 2.3.5 全血样品比色分析 | 第43-44页 |
| 2.4 小结 | 第44-45页 |
| 第三章 纸基纳米生物催化系统用于同时检测全血中的葡萄糖和尿酸 | 第45-58页 |
| 3.1 前言 | 第45页 |
| 3.2 实验部分 | 第45-47页 |
| 3.2.1 实验试剂和仪器 | 第45-46页 |
| 3.2.2 μPAD的的制备 | 第46页 |
| 3.2.3 双酶-无机杂化纳米花的合成和表征 | 第46页 |
| 3.2.4 纸基纳米生物催化系统应用于标准样分析 | 第46-47页 |
| 3.2.5 纸基纳米生物催化系统应用于实际样分析 | 第47页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第47-56页 |
| 3.3.1 实验设计原理 | 第47-48页 |
| 3.3.2 UAO浓度的优化 | 第48-49页 |
| 3.3.3 双酶-无机杂化纳米花的成长机理 | 第49-50页 |
| 3.3.4 双酶-无机杂化纳米花的表征 | 第50-51页 |
| 3.3.5 实验条件优化 | 第51-53页 |
| 3.3.6 活性对比 | 第53-54页 |
| 3.3.7 标准样分析 | 第54页 |
| 3.3.8 稳定性和选择性 | 第54-55页 |
| 3.3.9 全血分析 | 第55-56页 |
| 3.4 小结 | 第56-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-72页 |
| 附录A 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
