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Cpx双组份系统在TolC影响ExPEC生物被膜形成中的作用研究

摘要第7-9页
Abstract第9-11页
缩略词(ABBREVIATION)第12-13页
1. 前言第13-28页
    1.1. 肠外致病性大肠杆菌的研究进展第13-17页
        1.1.1. 大肠杆菌概述第13页
        1.1.2. 大肠杆菌的分类第13-14页
        1.1.3. 肠外致病性大肠杆菌概述第14页
        1.1.4. 肠外致病性大肠杆菌的致病机理第14-15页
        1.1.5. 肠外致病性大肠杆菌的流行病学第15-16页
        1.1.6. 肠外致病性大肠杆菌的公共卫生意义第16-17页
    1.2. 细菌生物被膜研究进展第17-22页
        1.2.1. 细菌生物被膜概述及其危害第17-18页
        1.2.2. 生物被膜的形成过程及参与的因子第18-20页
        1.2.3. 大肠杆菌生物被膜形成的调节第20-21页
        1.2.4. 生物被膜的控制与清除第21-22页
    1.3. Tol C蛋白概述第22-23页
        1.3.1. TolC蛋白概述第22页
        1.3.2. TolC蛋白与生物被膜形成第22-23页
    1.4. 细菌双组份信号转导系统研究进展第23-27页
        1.4.1. Cpx双组份信号转导系统第24-25页
        1.4.2. Cpx系统的激活第25页
        1.4.3. Cpx系统的调控功能第25-27页
    1.5. 研究的目的与意义第27-28页
2. 材料与方法第28-44页
    2.1. 材料第28-32页
        2.1.1. 菌株与载体第28-30页
        2.1.2. 主要试剂第30页
        2.1.3. 主要仪器设备第30-31页
        2.1.4. 主要培养基、抗生素及相关溶液的配置第31-32页
    2.2. 方法第32-44页
        2.2.1. 引物设计与合成第32-33页
        2.2.2. 猪源肠外致病性大肠杆菌的复苏增殖和基因组DNA提取第33页
        2.2.3. 质粒的小量制备第33-34页
        2.2.4. 琼脂糖凝胶电泳与DNA的纯化和回收第34-35页
        2.2.5. 大肠杆菌 X7213 感受态细胞的制备第35页
        2.2.6. 基因缺失株的构建第35-38页
        2.2.7. cpxR基因缺失株的构建第38-39页
        2.2.8. △tolC△cpxA和△tolC△cpxR双基因缺失株的构建第39页
        2.2.9. 回补菌株的构建第39-40页
        2.2.10. CpxA磷酸化位点定点突变菌株的构建第40-41页
        2.2.11. 试验菌株生长曲线的测定第41-42页
        2.2.12. 试验菌株对抗菌药物最小抑菌浓度的测定第42页
        2.2.13. 生物被膜形成能力实验第42-43页
        2.2.14. 扫描电子显微镜观察生物被膜细菌形态第43页
        2.2.15. 刚果红平板试验验证Curli合成能力第43-44页
3. 结果与分析第44-56页
    3.1. 基因缺失株的构建第44-46页
    3.2. 回补菌株的构建第46-48页
    3.3. 定点突变菌株的构建第48-49页
    3.4. 生长曲线的测定第49-50页
    3.5. 最小抑菌浓度(MIC)测定第50-51页
    3.6. 生物被膜形成能力分析第51-53页
        3.6.1. CpxA缺失和点突变菌株的生物被膜形成能力分析第51-52页
        3.6.2. CpxR缺失菌株的生物被膜形成能力分析第52-53页
    3.7. 扫描电子显微镜观察生物被膜细菌形态第53-54页
    3.8. 刚果红平板试验验证试验菌株Curli菌毛合成能力第54-56页
4. 讨论第56-59页
    4.1. ExPEC生物被膜的公共卫生意义第56页
    4.2. 基因缺失突变株的构建第56页
    4.3. 外膜蛋白TolC与细菌生物被膜的形成第56-57页
    4.4. Cpx双组份系统在生物被膜形成中的作用探讨第57-58页
    4.5. 后续研究的展望第58-59页
结论第59-60页
参考文献第60-72页
致谢第72-73页
附录第73页

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