| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 主要缩略语中英文索引 | 第11-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-16页 |
| 第2章 实验材料与研究方法 | 第16-28页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第16-19页 |
| 2.1.1 实验所用动物、细胞和试剂 | 第16-18页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第18-19页 |
| 2.2 主要试剂的配制 | 第19-20页 |
| 2.3 实验方法 | 第20-28页 |
| 2.3.1 动物模型的构建及实验分组 | 第20-22页 |
| 2.3.2 细胞培养 | 第22-23页 |
| 2.3.3 慢病毒感染贴壁细胞 | 第23-24页 |
| 2.3.4 蛋白质免疫印迹 | 第24-26页 |
| 2.3.5 统计学方法 | 第26-28页 |
| 第3章 实验结果 | 第28-46页 |
| 3.1 低剪切应力促进apoE~(-/-)小鼠AS病变 | 第28-30页 |
| 3.2 TET2抑制低剪切应力诱导的apoE~(-/-)小鼠AS病变 | 第30-34页 |
| 3.2.1 LV-TET2上调局部结扎apoE~(-/-)小鼠As斑块中TET2表达 | 第30-31页 |
| 3.2.2 TET2对apoE~(-/-)小鼠体重的影响 | 第31-32页 |
| 3.2.3 TET2对apoE~(-/-)小鼠血脂水平的影响 | 第32-33页 |
| 3.2.4 TET2对颈总动脉部分结扎的apoE~(-/-)小鼠As病变的影响 | 第33-34页 |
| 3.3 TET2抑制低剪切应力诱导的EndMT | 第34-36页 |
| 3.4 TET2通过调节Wnt/β-catenin信号通路抑制低剪切应力诱导的EndMT | 第36-39页 |
| 3.5 TET2对HUVECS中TGFβ1诱导的EndMT的影响 | 第39-46页 |
| 3.5.1 细胞转染效率免疫荧光检测结果 | 第39-40页 |
| 3.5.2 细胞形态的改变 | 第40-41页 |
| 3.5.3 细胞骨架的改变 | 第41-42页 |
| 3.5.4 Western blotting检测细胞蛋白质表达量 | 第42-46页 |
| 第4章 讨论 | 第46-50页 |
| 第5章 结论 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 文献综述 | 第56-78页 |
| References | 第72-78页 |
| 作者攻读硕士学位期间的科研成果 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80-82页 |
| 基金资助 | 第82页 |
