| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| abstract | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第16-21页 |
| 1.1 阿霉素肾病的研究概况 | 第16-18页 |
| 1.1.1 急性肾损伤的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.1.2 肾小球损伤的研究进展 | 第18页 |
| 1.2 海带多糖LJP61A的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.3 论文研究内容及主要技术路线 | 第19-21页 |
| 1.3.1 研究主要内容 | 第19-20页 |
| 1.3.2 研究技术路线如下图 | 第20-21页 |
| 第二章 LJP61A在阿霉素诱导的小鼠肾损伤中的作用 | 第21-40页 |
| 2.1 引言 | 第21-22页 |
| 2.2 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.2.1 实验材料及动物 | 第22页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第22-24页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.3.1 海带多糖的提取 | 第24-25页 |
| 2.3.2 海带多糖的分离纯化 | 第25-26页 |
| 2.3.3 小鼠肾损伤模型的构建及生命体征的检测 | 第26页 |
| 2.3.4 肾脏组织切片观察 | 第26-27页 |
| 2.3.5 小鼠血清相关生理生化及电解质的检测 | 第27页 |
| 2.3.6 尿液相关生化指标的检测 | 第27页 |
| 2.3.7 定量RT-PCR检测肾脏组织中炎性因子、肾损伤标志蛋白WT-1和纤维化标志物α-SMA的表达 | 第27-28页 |
| 2.4 结果与分析 | 第28-37页 |
| 2.4.1 LJP61A的均一成分检测 | 第28-29页 |
| 2.4.2 小鼠体重变化 | 第29页 |
| 2.4.3 LJP61A对小鼠尿液量与饮水量水平的变化的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.4 各剂量LJP61A对小鼠血清生化指标的影响 | 第30-31页 |
| 2.4.5 各剂量LJP61A对小鼠血清电解质指标的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.6 肾脏组织形态观察 | 第32-33页 |
| 2.4.7 各剂量LJP61A对小鼠脏器的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.8 组织HE染色 | 第34-35页 |
| 2.4.9 PAS染色 | 第35-36页 |
| 2.4.10 REAL-TIME PCR检测 | 第36-37页 |
| 2.5 讨论 | 第37-39页 |
| 2.6 结论 | 第39-40页 |
| 第三章 LJP61A对TGF-β1介导的信号通路的调控作用 | 第40-50页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-43页 |
| 3.2.1 MASSON染色 | 第40-41页 |
| 3.2.2 NEPHRIN免疫组化 | 第41页 |
| 3.2.3 WESTERN BLOT分析 | 第41-42页 |
| 3.2.4 REAL-TIME PCR检测TGF-β1/SMAD3信号通路表达情况 | 第42-43页 |
| 3.3 结果与分析 | 第43-48页 |
| 3.3.1 MASSON染色 | 第43-44页 |
| 3.3.2 NEPHRIN免疫组化 | 第44-45页 |
| 3.3.3 WESTERN-BLOT结果 | 第45-47页 |
| 3.3.4 REAL-TIME PCR检测 | 第47-48页 |
| 3.4 讨论 | 第48-49页 |
| 3.5 结论 | 第49-50页 |
| 第四章 LJP61A对TGF-β1诱导的足细胞转分化的调控作用 | 第50-62页 |
| 4.1 引言 | 第50-51页 |
| 4.2 实验方法 | 第51-54页 |
| 4.2.1 足细胞系培养 | 第51页 |
| 4.2.2 MTT法观察LJP61A对足细胞生长状态的影响 | 第51页 |
| 4.2.3 细胞形态学观察 | 第51-52页 |
| 4.2.4 REAL-TIME PCR观察足细胞结构标志分子表达变化 | 第52-53页 |
| 4.2.5 WESTERN-BLOT方法分析TGF-β1诱导后足细胞足突标志分子NEPHRIN不同时间点的表达情况 | 第53-54页 |
| 4.2.6 数据收集与统计分析 | 第54页 |
| 4.3 实验结果 | 第54-59页 |
| 4.3.1 细胞形态学观察 | 第54页 |
| 4.3.2 MTT法观察LJP61A对足细胞生长状态的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.3 WESTERN-BLOT方法分析TGF-β1诱导后足细胞足突标志分子NEPHRIN不同时间点的表达情况 | 第55-56页 |
| 4.3.4 REAL-TIME PCR观察足细胞结构标志分子表达变化 | 第56-57页 |
| 4.3.5 LJP61A对TGF-β1诱导的SMAD3和P38通路活化的影响 | 第57页 |
| 4.3.6 SMAD抑制剂SIS3和P38抑制剂SB 203580对TGF-β1诱导的α-SMA和NEPHRIN蛋白表达的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.7 SMAD3抑制剂和P38抑制剂存在时LJP61A对α-SMA和NEPHRIN MRNA的影响 | 第58-59页 |
| 4.4 讨论 | 第59-60页 |
| 4.5 结论 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-71页 |
| 攻读硕士学位期间的学术活动及成果情况 | 第71-72页 |
