摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第10-21页 |
1.1 2型糖尿病概述 | 第10-14页 |
1.1.1 糖尿病简介 | 第10页 |
1.1.2 T2D发病原因 | 第10-11页 |
1.1.3 T2D发病主要分子机制 | 第11-12页 |
1.1.4 T2D治疗现状及未来方向 | 第12-13页 |
1.1.5 T2D动物模型 | 第13-14页 |
1.2 二甲双胍 | 第14-15页 |
1.3 肠道微生物概述 | 第15-18页 |
1.3.1 肠道微生物概况 | 第15-16页 |
1.3.2 肠道菌群与2型糖尿病 | 第16-17页 |
1.3.3 肠道菌群的研究方法 | 第17-18页 |
1.4 甘露寡糖(MOS)概述 | 第18-19页 |
1.4.1 MOS概况 | 第18页 |
1.4.2 MOS与肠道微生物 | 第18-19页 |
1.4.3 MOS与糖尿病 | 第19页 |
1.5 立题依据及研究内容 | 第19-21页 |
1.5.1 立题依据 | 第19页 |
1.5.2 研究内容 | 第19-21页 |
第二章 实验材料与方法 | 第21-29页 |
2.1 实验材料与试剂 | 第21页 |
2.1.1 实验材料 | 第21页 |
2.1.2 实验试剂及药品 | 第21页 |
2.2 实验动物 | 第21-22页 |
2.3 实验仪器 | 第22页 |
2.4 实验方法 | 第22-28页 |
2.4.1 试剂配制 | 第22页 |
2.4.2 糖尿病小鼠模型与实验分组 | 第22-23页 |
2.4.3 空腹血糖(FBG)的检测 | 第23页 |
2.4.4 口服糖耐量/OGTT的检测 | 第23-24页 |
2.4.5 全血中糖化血红蛋白(HbA1c)的检测 | 第24页 |
2.4.6 血清胰岛素的检测 | 第24页 |
2.4.7 qRT-PCR法检测骨骼肌中胰岛素信号通路相关mRNA的表达 | 第24页 |
2.4.8 Western blot检测骨骼肌中胰岛素信号通路相关蛋白水平的表达 | 第24页 |
2.4.9 胰腺、肝脏、回肠组织病理切片及HE染色 | 第24-25页 |
2.4.10 盲肠SCFA测定 | 第25页 |
2.4.11 细菌16s高通量测序 | 第25-26页 |
2.4.12 生信分析 | 第26-28页 |
2.5 统计学分析 | 第28-29页 |
第三章 结果与讨论 | 第29-55页 |
3.1 C57BL/6J糖尿病小鼠模型评价 | 第29-30页 |
3.2 联合给药对小鼠饮水量、摄食量、体重的影响 | 第30-32页 |
3.2.1 小鼠饮水量变化 | 第30-31页 |
3.2.2 小鼠摄食量变化 | 第31-32页 |
3.2.3 小鼠体重变化 | 第32页 |
3.3 联合给药对血清生化指标的影响 | 第32-36页 |
3.3.1 小鼠空腹血糖 | 第32-33页 |
3.3.2 口服糖耐量 | 第33-34页 |
3.3.3 糖化血红蛋白 | 第34-35页 |
3.3.4 胰岛素分泌水平与胰岛素抵抗指数 | 第35-36页 |
3.4 联合给药对骨骼肌组织胰岛素抵抗相关基因、蛋白表达的影响 | 第36-39页 |
3.5 联合给药对小鼠胰岛、肝脏、回肠组织的影响 | 第39-41页 |
3.5.1 胰岛组织 | 第39-40页 |
3.5.2 肝组织 | 第40页 |
3.5.3 回肠组织 | 第40-41页 |
3.6 联合给药对小鼠盲肠短链脂肪酸的影响 | 第41-42页 |
3.7 联合给药对小鼠肠道微生物的影响 | 第42-50页 |
3.7.1 小鼠肠道菌群Alpha多样性分析 | 第42-43页 |
3.7.2 小鼠肠道菌群Beta多样性分析 | 第43-44页 |
3.7.3 小鼠肠道微生物群落组成分析 | 第44-46页 |
3.7.4 属水平差异微生物分析 | 第46-49页 |
3.7.5 OTU水平差异微生物分析 | 第49-50页 |
3.8 肠道关键OTU与生化指标相关性分析 | 第50-52页 |
3.9 菌群基因功能预测分析 | 第52-55页 |
结论与展望 | 第55-57页 |
主要结论 | 第55-56页 |
展望 | 第56-57页 |
致谢 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-65页 |
附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第65页 |