符号说明 | 第5-8页 |
中文摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
1 前言 | 第13-21页 |
1.1 猪肉质性状评价指标 | 第13-15页 |
1.1.1 肌内脂肪含量与其他肉质性状的关系 | 第13页 |
1.1.2 IMF 的概念 | 第13-14页 |
1.1.3 影响 IMF 沉积的因素 | 第14-15页 |
1.2 分子标记辅助选择 | 第15-17页 |
1.3 猪 P311 基因的研究进展 | 第17-19页 |
1.4 脂肪沉积相关基因研究进展 | 第19页 |
1.5 本研究的目的及意义 | 第19-21页 |
2 材料与方法 | 第21-32页 |
2.1 实验动物与样品采集 | 第21页 |
2.2 主要仪器设备 | 第21-22页 |
2.3 实验主要试剂及试剂盒 | 第22页 |
2.4 缓冲液及主要试剂的配制 | 第22-23页 |
2.5 主要生物学软件 | 第23-24页 |
2.6 肉质测定 | 第24-25页 |
2.7 PCR-SSCP 检测 | 第25-29页 |
2.7.1 耳组织样品 DNA 提取 | 第25-26页 |
2.7.2 引物设计 | 第26-27页 |
2.7.3 PCR 扩增及扩增产物的高温变性 | 第27-28页 |
2.7.4 SSCP 检测 | 第28-29页 |
2.7.5 测序确定突变类型 | 第29页 |
2.8 P311 及相关基因的荧光定量 PCR 检测 | 第29-32页 |
2.8.1 RNA 提取及 mRNA 反转录 | 第29-30页 |
2.8.2 荧光定量 PCR 检测 | 第30-32页 |
3 结果与分析 | 第32-58页 |
3.1 肉质性状统计分析结果 | 第32-38页 |
3.1.1 莱芜猪和鲁莱黑猪肉质性状测定数据的描述性统计分析 | 第32-34页 |
3.1.2 试验猪肉质性状间相关分析 | 第34-38页 |
3.2 P311 基因多态性的 PCR-SSCP 检测 | 第38-44页 |
3.2.1 试验猪耳组织基因组的提取 | 第38页 |
3.2.2 PCR 扩增基因组 DNA | 第38-40页 |
3.2.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳 SSCP 检测 | 第40-42页 |
3.2.4 抽样测序确定各位点突变类型 | 第42-44页 |
3.3 多态位点对肉质性状的影响 | 第44-51页 |
3.3.1 SNP 1F/1R 多态位点对肉质性状的影响 | 第44-46页 |
3.3.2 SNP 2F/2R 多态位点对肉质性状的影响 | 第46-47页 |
3.3.3 SNP 3F/3R 多态位点对肉质性状的影响 | 第47-48页 |
3.3.4 polyA 1F/1R 多态位点对肉质性状的影响 | 第48-49页 |
3.3.5 polyA 2F/2R 多态位点对肉质性状的影响 | 第49-51页 |
3.3.6 多态位点间的相互作用对肉质性状的影响 | 第51页 |
3.4 P311 及相关基因的荧光定量 PCR 检测 | 第51-54页 |
3.4.1 RNA 提取及 mRNA 反转录 | 第51-52页 |
3.4.2 实时荧光定量 PCR 检测 | 第52-54页 |
3.5 多态位点各基因型个体的基因表达水平 | 第54-58页 |
3.5.1 SNP 1F/1R 位点处各基因型个体的基因表达水平 | 第54-55页 |
3.5.2 SNP 2F/2R 位点处各基因型个体的基因表达水平 | 第55-56页 |
3.5.3 SNP 3F/3R 位点处各基因型个体的基因表达水平 | 第56页 |
3.5.4 polyA 1F/1R 位点处各基因型个体的基因表达水平 | 第56-57页 |
3.5.5 polyA 2F/2R 位点处各基因型个体的基因表达水平 | 第57-58页 |
4 讨论 | 第58-60页 |
4.1 肉质性状间的相关关系 | 第58页 |
4.2 基因的非编码序列对基因表达及性状表现的影响 | 第58-59页 |
4.3 脂肪细胞分化与脂肪沉积 | 第59-60页 |
5 结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第72页 |