| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 主要符号对照表 | 第6-10页 |
| 第一章 引言 | 第10-22页 |
| 1.1 青藏高原气候特征 | 第10页 |
| 1.2 低氧环境对动物的影响 | 第10-14页 |
| 1.2.1 心脏对低氧的应答 | 第12页 |
| 1.2.2 肝脏对低氧的应答 | 第12-13页 |
| 1.2.3 脑对低氧的应答 | 第13页 |
| 1.2.4 骨骼肌对低氧的应答 | 第13-14页 |
| 1.3 高原鼠兔的生物学特征 | 第14-16页 |
| 1.4 高原鼠兔对低氧的适应机制 | 第16-17页 |
| 1.5 精子特异性乳酸脱氢酶 | 第17-19页 |
| 1.5.1 精子特异性乳酸脱氢酶的简介 | 第17-18页 |
| 1.5.2 精子特异性乳酸脱氢酶的功能 | 第18页 |
| 1.5.3 低氧对精子特异性乳酸脱氢酶的影响 | 第18-19页 |
| 1.6 RNAi技术 | 第19-21页 |
| 1.6.1 RNAi技术简介 | 第19-20页 |
| 1.6.2 RNAi作用机制 | 第20-21页 |
| 1.7 本实验研究的目的意义 | 第21-22页 |
| 第二章 实验方法 | 第22-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-25页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第22页 |
| 2.1.2 实验主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.3 主要试剂盒 | 第23页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第23-25页 |
| 2.2 技术路线 | 第25-26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-31页 |
| 2.3.1 RNA干扰在高原鼠兔体内抑制Ldh-c基因表达的研究 | 第26页 |
| 2.3.2 抗疲劳实验 | 第26页 |
| 2.3.3 Ldh-c基因的扩增 | 第26-27页 |
| 2.3.4 Real-timePCR | 第27-28页 |
| 2.3.5 Westernblot法测定组织LDHC蛋白表达水平 | 第28页 |
| 2.3.6 组织中蛋白含量的测定 | 第28-29页 |
| 2.3.7 组织中LDH活力的测定 | 第29页 |
| 2.3.8 组织中LD含量的测定 | 第29页 |
| 2.3.9 组织中ATP含量的测定 | 第29页 |
| 2.3.10 血清中LDH活力、LD含量测定 | 第29-30页 |
| 2.3.11 干扰率的计算 | 第30页 |
| 2.3.12 数据统计分析 | 第30-31页 |
| 第三章 结果分析 | 第31-45页 |
| 3.1 RT-PCR | 第31页 |
| 3.2 抗疲劳试验 | 第31-32页 |
| 3.3 高原鼠兔组织中Ldh-c基因在mRNA水平表达 | 第32-35页 |
| 3.4 高原鼠兔组织中Ldh-c基因在蛋白水平表达 | 第35-37页 |
| 3.5 高原鼠兔心肌、肝脏、脑和骨骼肌组织中LDH比活力含量 | 第37-39页 |
| 3.6 高原鼠兔心肌、肝脏、脑和骨骼肌组织中LD含量 | 第39-41页 |
| 3.7 高原鼠兔心肌、肝脏、脑和骨骼肌组织中ATP含量 | 第41-43页 |
| 3.8 血清中LDH、LD含量及干扰率 | 第43-45页 |
| 讨论 | 第45-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 作者简介 | 第56-57页 |
