| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 植物叶色突变体研究进展 | 第12-24页 |
| 1.1 植物叶色突变概述 | 第12-13页 |
| 1.2 植物缺绿突变体的发现和研究现状 | 第13-14页 |
| 1.3 植物缺绿突变体缺绿性状的遗传研究现状 | 第14-15页 |
| 1.4 植物缺绿突变的生化和分子机制研究 | 第15-20页 |
| 1.4.1 叶绿素生物合成途径基因突变导致植物缺绿 | 第15-17页 |
| 1.4.2 血红素到光敏色素生色团生物合成途径中基因突变导致植物缺绿 | 第17页 |
| 1.4.3 叶绿体编码转运蛋白的基因突变导致植物缺绿 | 第17-18页 |
| 1.4.4 叶绿素生物合成的分子与信号调控 | 第18-19页 |
| 1.4.5 其它基因突变导致植物缺绿 | 第19-20页 |
| 1.5 植物蛋白组学研究进展 | 第20-22页 |
| 1.5.1 蛋白质样品制备方法研究进展 | 第20页 |
| 1.5.2 蛋白质样品分离和检测技术进展 | 第20-21页 |
| 1.5.3 蛋白质组生物信息学分析技术 | 第21页 |
| 1.5.4 植物缺绿突变体差异蛋白质组学研究现状 | 第21-22页 |
| 1.6 植物缺绿突变体突变基因克隆和功能鉴定研究 | 第22页 |
| 1.7 本研究的目的和意义 | 第22-24页 |
| 第二章 芥菜型油菜叶片蛋白质组2-DE 分析条件的优化 | 第24-35页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 材料和方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 材料 | 第25页 |
| 2.2.2 仪器及试剂 | 第25页 |
| 2.2.3 试验方法 | 第25-28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-33页 |
| 2.3.1 胶条pH 范围对2-DE 图谱的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.2 凝胶浓度对2-DE 图谱的影响 | 第29页 |
| 2.3.3 三种蛋白提取方法制备的蛋白样品的SDS-PAGE 分析 | 第29-30页 |
| 2.3.4 三种蛋白质提取方法对2-DE 图谱的影响 | 第30-33页 |
| 2.4 讨论与结论 | 第33-35页 |
| 第三章 芥菜型油菜黄化突变体L638-y 及其野生型叶片蛋白质组及代谢途径变化分析 | 第35-57页 |
| 3.1 引言 | 第35页 |
| 3.2 材料和方法 | 第35-37页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第35页 |
| 3.2.2 仪器及试剂 | 第35-36页 |
| 3.2.3 研究方法 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与分析 | 第37-49页 |
| 3.3.1 突变体 L638-y 和野生型 L638-g 叶片蛋白质组 2-DE 分析 | 第37-39页 |
| 3.3.2 不同生长时期 L638-y 和 L638-g 叶片差异蛋白质分析 | 第39-40页 |
| 3.3.3 L638-y 和 L638-g 叶片差异蛋白质的鉴定和功能分析 | 第40-46页 |
| 3.3.4 L638-y 和 L638-g 叶片差异蛋白的聚类分析 | 第46-49页 |
| 3.4 讨论 | 第49-56页 |
| 3.4.1 突变体 L638-y 叶片蛋白组变化 | 第49-50页 |
| 3.4.2 突变体 L638-y 差异蛋白质与代谢途径变化 | 第50-55页 |
| 3.4.3 突变体 L638-y 中差异蛋白质表达模式及代谢网络的变化 | 第55-56页 |
| 3.5 结论 | 第56-57页 |
| 第四章 结论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 作者简介 | 第69页 |
