| 缩略语表 | 第7-10页 |
| 中文摘要 | 第10-14页 |
| 英文摘要 | 第14-18页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 文献回顾 | 第21-52页 |
| 第一部分 NDRG2、NIS在甲状腺癌中的表达及稳定过表达NDRG2基因的甲状腺髓样癌细胞系的建立 | 第52-73页 |
| 引言 | 第52-53页 |
| 1 实验材料 | 第53-58页 |
| 1.1 甲状腺癌组织芯片 | 第53页 |
| 1.2 细胞系、菌种、质粒 | 第53-54页 |
| 1.3 实验试剂 | 第54-55页 |
| 1.4 主要仪器 | 第55-58页 |
| 2 实验方法 | 第58-67页 |
| 2.1 免疫组化 | 第58-59页 |
| 2.2 质粒的转化、扩增与鉴定 | 第59-61页 |
| 2.3 慢病毒包装 | 第61-62页 |
| 2.4 人甲状腺髓样癌NDRG2 过表达稳定转染细胞系的建立 | 第62-63页 |
| 2.5 RT-PCR | 第63-65页 |
| 2.6 Western-blot | 第65-67页 |
| 2.7 统计学分析 | 第67页 |
| 3 实验结果 | 第67-71页 |
| 3.1 免疫组化 | 第67-68页 |
| 3.2 质粒鉴定 | 第68-69页 |
| 3.3 稳定转染细胞系的建立 | 第69-70页 |
| 3.4 Western-blot | 第70页 |
| 3.5 RT-PCR | 第70-71页 |
| 4 讨论 | 第71-73页 |
| 第二部分 NDRG2 过表达对人甲状腺髓样癌细胞体外生物学特性及摄碘的影响 | 第73-87页 |
| 引言 | 第73-74页 |
| 1 实验材料 | 第74-75页 |
| 1.1 实验试剂 | 第74页 |
| 1.2 主要仪器 | 第74-75页 |
| 2 实验方法 | 第75-78页 |
| 2.1 细胞培养 | 第75页 |
| 2.2 MTT | 第75-76页 |
| 2.3 平板克隆形成实验 | 第76页 |
| 2.4 单层细胞划痕实验 | 第76页 |
| 2.5 Transwell侵袭小室实验 | 第76-77页 |
| 2.6 FCM检测NDRG2 过表达对甲状腺髓样癌细胞周期的影响 | 第77页 |
| 2.7 FCM检测NDRG2 过表达对甲状腺髓样癌细胞凋亡的影响 | 第77-78页 |
| 2.8 蛋白印迹法检测细胞周期蛋白的变化 | 第78页 |
| 2.9 碘摄取实验 | 第78页 |
| 2.10 统计学分析 | 第78页 |
| 3 实验结果 | 第78-84页 |
| 3.1 MTT | 第78-79页 |
| 3.2 平板克隆形成实验 | 第79-80页 |
| 3.3 单层细胞划痕实验 | 第80-81页 |
| 3.4 Transwell侵袭小室实验 | 第81-82页 |
| 3.5 FCM检测细胞周期 | 第82-83页 |
| 3.6 FCM检测细胞凋亡 | 第83页 |
| 3.7 Western-blot检测细胞周期蛋白的变化 | 第83-84页 |
| 3.8 碘摄取实验 | 第84页 |
| 4 讨论 | 第84-87页 |
| 第三部分 NDRG2 过表达对甲状腺髓样癌细胞裸鼠体内成瘤及增殖的影响 | 第87-93页 |
| 1 实验材料 | 第87-88页 |
| 1.1 细胞系和裸鼠 | 第87页 |
| 1.2 实验试剂和主要仪器 | 第87-88页 |
| 2 实验方法 | 第88-89页 |
| 2.1 细胞培养 | 第88页 |
| 2.2 裸鼠皮下移植瘤模型的建立 | 第88页 |
| 2.3 裸鼠皮下移植瘤模型的观察与测量 | 第88-89页 |
| 2.4 NDRG2 转染TT细胞系介导的肿瘤99mTcO4-显像 | 第89页 |
| 2.5 统计学分析 | 第89页 |
| 3 实验结果 | 第89-91页 |
| 3.1 裸鼠皮下移植瘤模型的观察与测量 | 第89-91页 |
| 3.2 NDRG2 过表达后裸鼠皮下移植瘤模型肿瘤99mTcO4-显像 | 第91页 |
| 4 讨论 | 第91-93页 |
| 小结 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-108页 |
| 个人简历和研究成果 | 第108-109页 |
| 致谢 | 第109页 |
