| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第10-13页 |
| 2 材料与方法 | 第13-20页 |
| 2.1 大豆子叶节遗传转化体系的优化 | 第13-15页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第13页 |
| 2.1.2 农杆菌菌株和质粒 | 第13页 |
| 2.1.3 试验过程中使用的培养基 | 第13页 |
| 2.1.4 试验方法 | 第13-15页 |
| 2.2 基因组提取方法的优化 | 第15-16页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第15页 |
| 2.2.2 试验方法 | 第15-16页 |
| 2.3 GmUBC2 基因转化植株的检测 | 第16-18页 |
| 2.3.1 GmUBC2 基因 T0代转化植株的除草剂筛选 | 第16页 |
| 2.3.2 GmUBC2 基因 T0/T1转化植株的 PCR 检测 | 第16-17页 |
| 2.3.3 GmUBC2 基因 T0/T1转化植株的 RT-PCR 检测 | 第17-18页 |
| 2.4 LAMP 与 PCR 法检测转基因大豆的初步比较 | 第18-20页 |
| 2.4.1 PCR 法检测转基因大豆 | 第18页 |
| 2.4.2 LAMP 法检测转基因大豆 | 第18-20页 |
| 3 结果与分析 | 第20-36页 |
| 3.1 大豆子叶节遗传转化条件的优化 | 第20-23页 |
| 3.1.1 超声波结合抽真空处理对子叶节丛生芽诱导和转化效率的影响 | 第20-21页 |
| 3.1.2 侵染阶段摇床转速对子叶节平均丛生芽数的影响 | 第21页 |
| 3.1.3 抗氧化剂 DTT 对子叶节丛生芽诱导的影响 | 第21-22页 |
| 3.1.4 不同浓度 Basta 对大豆抗性芽诱导率的影响 | 第22-23页 |
| 3.2 大豆基因组提取方法的优化 | 第23-28页 |
| 3.2.1 嫩叶期大豆叶片基因组 DNA 的提取 | 第23-26页 |
| 3.2.2 开花期大豆叶片基因组 DNA 的提取 | 第26-28页 |
| 3.3 GmUBC2 基因转化植株的检测 | 第28-33页 |
| 3.3.1 GmUBC2 基因转化植株 T0代 PCR 检测 | 第28-31页 |
| 3.3.2 GmUBC2 基因转化植株 T0代 RT-PCR 检测 | 第31-32页 |
| 3.3.3 GmUBC2 基因转化植株 T1代 PCR 检测 | 第32页 |
| 3.3.4 GmUBC2 基因转化植株 T1代 RT-PCR 检测 | 第32-33页 |
| 3.4 LAMP 技术检测转基因大豆效率的初步探讨 | 第33-36页 |
| 4 讨论 | 第36-39页 |
| 4.1 影响农杆菌介导的大豆子叶节遗传转化效率的因素 | 第36-37页 |
| 4.2 大豆基因组提取方法的优化 | 第37-38页 |
| 4.3 LAMP 技术和 PCR 技术检测转基因大豆效率的比较 | 第38-39页 |
| 5 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-46页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第46-47页 |
| 作者简介 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
