| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 第一章 前言 | 第10-24页 |
| 1.1 引言 | 第10-11页 |
| 1.2 荧光化学传感器 | 第11-12页 |
| 1.3 荧光化学传感器的构造 | 第12页 |
| 1.4 荧光化学传感器的基本原理 | 第12-18页 |
| 1.4.1 光诱导电子转移(PET) | 第12-14页 |
| 1.4.2 分子内电荷转移(ICT) | 第14-15页 |
| 1.4.3 荧光共振能量转移(FRET) | 第15-17页 |
| 1.4.4 激发态分子内质子转移(ESIPT) | 第17-18页 |
| 1.5 单光子荧光 | 第18-19页 |
| 1.6 双光子吸收和荧光定义 | 第19-20页 |
| 1.7 水合肼荧光探针的研究进展 | 第20-24页 |
| 1.7.1 与丙二腈及其衍生物形成腙 | 第20-21页 |
| 1.7.3 切断酯键脱保护类探针 | 第21-22页 |
| 1.7.4 Gabriel机理下的肼解类探针 | 第22-24页 |
| 第二章 硫化氢荧光探针的设计、合成 | 第24-31页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 探针CNHS的设计思路 | 第25页 |
| 2.3 仪器与试剂 | 第25-27页 |
| 2.4 目标化合物CNHS的合成以及结构表征 | 第27-29页 |
| 2.4.1 传感器CNHS的合成步骤 | 第27页 |
| 2.4.2 探针CNHS的合成及表征 | 第27-29页 |
| 2.5 目标化合物CNHS的紫外吸收和荧光发射光谱变 | 第29-30页 |
| 2.6 本章小结与展望 | 第30-31页 |
| 第三章 水合肼双光子荧光探针的设计、合成及其光学性质的研究 | 第31-54页 |
| 3.1 引言 | 第31-32页 |
| 3.2 双光子荧光探针TNQ的设计思路 | 第32页 |
| 3.3 仪器与试剂 | 第32-34页 |
| 3.4 光谱测试条件 | 第34-37页 |
| 3.4.1 测试溶液的配制 | 第34页 |
| 3.4.2 探针的荧光滴定实验 | 第34页 |
| 3.4.3 离子选择性和竞争性实验 | 第34-35页 |
| 3.4.4 pH对探针TNQ和TNQ+N_2H_4稳定性的影响实验 | 第35页 |
| 3.4.5 荧光量子产率的测试 | 第35页 |
| 3.4.6 双光子吸收截面的计算 | 第35-36页 |
| 3.4.7 高效液相色谱的检测 | 第36页 |
| 3.4.8 细胞毒性和细胞成像实验 | 第36-37页 |
| 3.5 目标化合物TNQ的合成以及结构表征 | 第37-40页 |
| 3.5.1 传感器TNQ的合成步骤 | 第37页 |
| 3.5.2 探针TNQ的合成及表征 | 第37-40页 |
| 3.6 结果与讨论 | 第40-53页 |
| 3.6.1 紫外吸收和荧光光谱的研究 | 第40-41页 |
| 3.6.2 离子和有机胺小分子选择性和竞争性实验 | 第41-44页 |
| 3.6.3 pH对探针TNQ和TNQ+N_2H_4的荧光影响实验 | 第44-45页 |
| 3.6.4 探针TNQ和TNQ+N_2H_4的双光子吸收截面 | 第45-46页 |
| 3.6.5 探针TNQ与水合肼的反应机理研究 | 第46-49页 |
| 3.6.6 理论计算 | 第49-50页 |
| 3.6.7 探针TNQ用于气态水合肼检测的应用 | 第50-51页 |
| 3.6.8 探针TNQ的细胞毒性测试 | 第51页 |
| 3.6.9 双光子荧光细胞成像实验 | 第51-53页 |
| 3.7 本章小结 | 第53-54页 |
| 第四章 总结 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-71页 |
| 硕士期间的成果和发表的论文 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
