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叉枝松藻抗凝血多糖及其寡糖的制备和结构研究

摘要第5-8页
Abstract第8-11页
前言第17-46页
    1 绿藻多糖的研究进展第18-26页
        1.1 绿藻多糖结构的研究进展第18-21页
        1.2 绿藻多糖活性的研究进展第21-26页
            1.2.1 抗凝血活性第21-22页
            1.2.2 抗病毒活性第22-23页
            1.2.3 抗肿瘤活性第23页
            1.2.4 免疫调节活性第23-24页
            1.2.5 抗氧化活性第24-25页
            1.2.6 降血脂活性第25页
            1.2.7 其他活性第25-26页
    2 多糖的提取和纯化方法第26-33页
        2.1 多糖的提取方法第26-29页
            2.1.1 水提取法第26页
            2.1.2 酸、碱提取法第26-27页
            2.1.3 酶解提取法第27页
            2.1.4 超声提取法第27-28页
            2.1.5 微波提取法第28页
            2.1.6 超临界流体C02提取法第28-29页
        2.2 多糖的分离纯化方法第29-32页
            2.2.1 多糖脱色方法第29页
            2.2.2 多糖脱蛋白方法第29-30页
            2.2.3 多糖的纯化方法第30-32页
        2.3 多糖的纯度分析及分子量测定第32-33页
    3 多糖结构研究方法第33-40页
        3.1 多糖一级结构研究第33-39页
            3.1.1 单糖组成分析第33-35页
            3.1.2 单糖绝对构型(D/L)的测定第35页
            3.1.3 高碘酸氧化第35页
            3.1.4 Smith降解第35-36页
            3.1.5 甲基化反应及GC-MS第36页
            3.1.6 红外光谱第36-37页
            3.1.7 核磁共振分析(NMR)第37-38页
            3.1.8 生物学方法第38-39页
        3.2 多糖高级结构研究第39-40页
            3.2.1 X射线衍射法第39页
            3.2.2 原子力显微镜法第39-40页
            3.2.3 圆二色谱法第40页
    4 寡糖的研究第40-45页
        4.1 寡糖的制备方法第40-42页
            4.1.1 化学降解法第40-41页
            4.1.2 物理降解法第41页
            4.1.3 酶降解法第41-42页
        4.2 寡糖的分离纯化第42页
        4.3 寡糖的结构研究方法第42-44页
            4.3.1 电喷雾电离质谱(ESI-MS)第43页
            4.3.2 快原子轰击质谱(FAB-MS)第43-44页
            4.3.3 基质辅助激光解吸离子化质谱(MALDI-MS)第44页
            4.3.4 色谱-质谱联用技术第44页
        4.4 寡糖的生物活性第44-45页
    5 本课题的立题背景和研究意义第45-46页
第一章 叉枝松藻多糖的提取和理化性质研究第46-60页
    1 实验材料与仪器第46-47页
        1.1 实验原料第46页
        1.2 实验试剂第46页
        1.3 实验仪器第46-47页
    2 实验方法第47-51页
        2.1 乙醇脱脂第47页
        2.2 叉枝松藻多糖的提取第47-48页
        2.3 叉枝松藻多糖的理化性质研究第48-50页
            2.3.1 总糖含量的测定第48-49页
            2.3.2 蛋白质含量的测定第49页
            2.3.3 硫酸基含量的测定第49-50页
            2.3.4 糖醛酸含量的测定第50页
        2.4 单糖组成分析第50-51页
            2.4.1 薄层色谱法第50-51页
            2.4.2 高效液相色谱法第51页
    3 实验结果与讨论第51-59页
        3.1 乙醇脱脂第51页
        3.2 叉枝松藻多糖的提取第51-52页
        3.3 理化性质测定第52-56页
            3.3.1 总糖含量测定第52-53页
            3.3.2 蛋白含量测定第53-54页
            3.3.3 硫酸基含量测定第54页
            3.3.4 糖醛酸含量测第54-56页
        3.4 单糖组成测定第56-59页
            3.4.1 薄层色谱分析第56页
            3.4.2 高效液相色谱分析第56-59页
    4 小结第59-60页
第二章 叉枝松藻多糖的分离纯化及结构研究第60-118页
    1 实验材料与仪器第60-61页
        1.1 实验原料第60页
        1.2 实验试剂与材料第60-61页
        1.3 实验仪器第61页
    2 实验方法第61-66页
        2.1 多糖的分离纯化第61页
            2.1.1 离子交换色谱分离纯化第61页
            2.1.2 凝胶渗透色谱分离纯化第61页
        2.2 理化性质分析第61-62页
            2.2.1 丙酮酸含量测定第62页
        2.3 分子量测定及纯度分析第62页
        2.4 单糖组成分析第62-63页
        2.5 单糖绝对构型(D/L)的测定第63页
        2.6 红外光谱分析第63页
        2.7 脱硫酸基反应第63页
        2.8 甲基化反应及气质分析第63-65页
            2.8.1 试剂处理第64页
            2.8.2 甲基化反应第64页
            2.8.3 气质色谱分析第64-65页
        2.9 核磁共振波谱分析第65页
        2.10 抗凝血活性分析第65-66页
    3 实验结果与讨论第66-116页
        3.1 多糖的分离纯化第66-68页
            3.1.1 阴离子交换色谱分离纯化第66-67页
            3.1.2 凝胶渗透色谱分离纯化第67-68页
        3.2 理化性质分析第68-70页
        3.3 分子量测定第70-73页
        3.4 单糖组成分析第73-74页
        3.5 单糖绝对构型(D/L)的测定第74-77页
        3.6 红外光谱分析第77-78页
        3.7 甲基化及GC-MS分析第78-94页
            3.7.1 甲基化反应第79-80页
            3.7.2 GC-MS分析第80-94页
        3.8 核磁共振波谱分析第94-113页
            3.8.1 脱硫多糖dsCP2-1核磁共振波谱分析第94-99页
            3.8.2 多糖CP2-1核磁共振波谱分析第99-103页
            3.8.3 脱硫多糖dsCP1-1核磁共振波谱分析第103-108页
            3.8.4 多糖CP1-1核磁共振波谱分析第108-110页
            3.8.5 多糖dsHP1-1核磁共振波谱分析第110-113页
        3.9 抗凝血活性分析第113-116页
    4 本章小结第116-118页
第三章 叉枝松藻低分子量多糖的制备、结构和抗凝血活性研究第118-141页
    1 实验材料与仪器第118页
        1.1 实验原料第118页
        1.2 实验试剂与材料第118页
        1.3 实验仪器第118页
    2 实验方法第118-120页
        2.1 多糖CP1酸降解条件的优化第119页
            2.1.1 多糖降解第119页
            2.1.2 薄层色谱法第119页
            2.1.3 高效凝胶渗透色谱法第119页
        2.2 低分子量多糖的制备第119页
        2.3 化学组成分析第119-120页
            2.3.1 硫酸基含量测定第119-120页
            2.3.2 单糖组成分析第120页
        2.4 脱硫酸基反应第120页
        2.5 甲基化反应及气质分析第120页
        2.6 核磁共振波谱分析第120页
        2.7 抗凝血活性分析第120页
    3 实验结果与讨论第120-140页
        3.1 多糖CP1酸降解条件的优化第120-124页
            3.1.1 薄层色谱分析第120-122页
            3.1.2 高效凝胶渗透色谱分析第122-124页
        3.2 低分子量多糖的制备第124-125页
        3.3 化学组成分析第125-128页
            3.3.1 硫酸基含量测定第125-126页
            3.3.2 分子量测定第126-127页
            3.3.3 单糖组成分析第127-128页
        3.4 甲基化反应及GC-MS分析第128-134页
        3.5 核磁共振波谱分析第134-139页
        3.6 抗凝血活性分析第139-140页
    4 本章小结第140-141页
第四章 寡糖的制备与结构研究第141-173页
    1 实验材料与仪器第141-142页
        1.1 实验原料第141页
        1.2 实验试剂与材料第141-142页
        1.3 实验仪器第142页
    2 实验方法第142-143页
        2.1 寡糖降解条件摸索第142页
        2.2 寡糖制备及分离纯化第142页
        2.3 寡糖纯度分析第142-143页
        2.4 质谱分析第143页
        2.5 单糖组成分析第143页
        2.6 甲基化反应及GC-MS分析第143页
        2.7 核磁共振波谱分析第143页
    3 实验结果与讨论第143-172页
        3.1 寡糖制备及分离纯化第143-147页
        3.2 寡糖纯度分析第147-148页
        3.3 一级质谱分析第148-154页
        3.4 单糖组成第154-155页
        3.5 甲基化反应及气质分析第155-156页
        3.6 核磁共振波谱分析第156-163页
            3.6.1 寡糖F3的核磁共振波谱分析第156-161页
            3.6.2 寡糖F2及F4-F7的~1H NMR分析第161-163页
        3.7 级质谱分析第163-172页
    4 本章小结第172-173页
参考文献第173-187页
结语第187-190页
创新点第190-191页
研究成果第191-193页
致谢第193-194页
个人简介第194页

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